Test in vitro do oceny immunomodulacyjnego wpływu monocytów na proliferację leukocytów

0 wyświetleń2:46 min • July 8th, 2025

Weź wielodołkową płytkę z przylegającą hodowlą mezenchymalnych komórek macierzystych (MSC).

Dodaj komórki jednojądrzaste krwi obwodowej lub PBMC i inkubuj.

MSCs wydzielają czynnik wzrostu hepatocytów, indukując monocyty do uzyskania fenotypu immunomodulującego, wytwarzającego interleukinę-10 lub IL-10.

Przenieść supernatant zawierający PBMC do probówki.

Dodaj pokryte przeciwciałem kulki magnetyczne wiążące się z markerem powierzchniowym monocytów CD14.

Użyj separatora magnetycznego, aby wyizolować monocyty CD14 + i dodać je do studzienek wielodołkowych w rosnących stężeniach.

Wprowadź fluorescencyjne limfocyty T CD4 + efektorowe CD4 + znakowane barwnikiem fluorescencyjnym.

Dodaj mikrogranulki sprzężone z przeciwciałami, wiążące się specyficznie z markerami powierzchniowymi limfocytów T CD3 i CD28, aktywując komórki.

W grupie kontrolnej, w której brakuje monocytów, aktywowane limfocyty T proliferują, a każdy podział komórki zmniejsza intensywność fluorescencji CFSE w komórkach potomnych.

Jednak w kokulturach monocyty indukowane przez MSC wydzielają IL-10, hamując proliferację efektorowych limfocytów T.

Za pomocą cytometrii przepływowej obserwuj mniej limfocytów T wykazujących zmniejszoną intensywność fluorescencji CFSE wraz ze wzrostem stężeń monocytów, co wskazuje na zahamowanie proliferacji efektorowych limfocytów T przez monocyty indukowane przez MSC.

Aby wykonać test supresji efektorowej, należy rozpocząć od skonfigurowania kokultury MSC-PBMC z 2,5 x 106 PBMC, współhodowlanej z 250 000 MSC, aby zapewnić wystarczającą ilość współhodowlanych PBMC MSC do selekcji subpopulacji.

Po 48 do 72 godzinach w temperaturze 37 stopni Celsjusza należy wybrać interesujące nas leukocyty immunomodulujące indukowane przez MSC za pomocą odpowiednich kulek magnetycznych. Następnie dodaj znakowane CFSE allogeniczne limfocyty T CD4-dodatnie w 1 mililitrze kompletnej pożywki leukocytowej na studzienkę, w różnych proporcjach eksperymentalnych.

Następnie dodaj mikrogranulki sprzężone z anty-CD3 / 28 w stosunku 1 do 1 kulki do komórki, aby stymulować limfocyty T CD4-dodatnie. W trzecim dniu kohodowli oceń proliferację limfocytów T CD4-dodatnich znakowanych CFSE za pomocą cytometrii przepływowej.

11:05

Produkcja i podawanie terapeutycznych sferoid mezenchymalnych komórek macierzystych/zrębowych (MSC) przygotowanych w hodowlach 3D w warunkach wolnych od ksenotypów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:04

Ocena cytotoksycznego i immunomodulującego działania substancji w precyzyjnie pokrojonych ludzkich wycinkach płuc

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:42

Paramyksowirusy w immunomodulacji ukierunkowanej na nowotwór: projektowanie i ocena ex vivo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:55

Indukcja anergii specyficznej dla alloantygenu w ludzkich mononuklearnych komórkach krwi obwodowej poprzez stymulację alloantygenem z blokadą sygnału kostymulującego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:16

Test in vitro oparty na pulsacyjnych komórkach dendrytycznych opartych na szczepionce w celu indukowania proliferacji limfocytów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:42

Model in vitro do badania heterogeniczności różnicowania i polaryzacji ludzkich makrofagów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:26

In vitro Test do oceny wpływu szlaków immunoregulacyjnych na funkcję efektora limfocytów T CD4 specyficznych dla HIV

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:20

Ocena właściwości immunomodulacyjnych ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych (MSC)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:38

Kwantyfikacja chemotaksji ludzkich monocytów in vitro i handlu mysimi limfocytami in vivo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:41

Kwantyfikacja transmigracji monocytów i tworzenia komórek piankowatych u osób z przewlekłymi stanami zapalnymi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026