Analiza w czasie rzeczywistym migracji rezydentnych limfocytów T w różnych regionach guza przy użyciu mikroskopii konfokalnej

0 wyświetleń4:23 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od wycinka guza płuc zawierającego rezydujące limfocyty T.

Limfocyty T migrują przez mikrośrodowisko guza i wchodzą w interakcje z komórkami nowotworowymi i elementami zrębu, pełniąc funkcje odpornościowe.

Skład mikrośrodowiska guza silnie wpływa na przemieszczanie się i prędkość limfocytów T.

Dodaj odrębne fluorescencyjnie sprzężone przeciwciała, aby znakować limfocyty T, komórki nowotworowe i elementy zrębu w mikrośrodowisku.

Dodaj DAPI, który nacieka komórki z uszkodzoną błoną plazmatyczną, aby zabarwić jądro, umożliwiając wizualizację martwiczych regionów w obrębie guza

.

Obserwuj zabarwioną próbkę pod mikroskopem konfokalnym.

Używając odpowiedniego światła fluorescencyjnego, wybierz interesujący Cię obszar nowotworowy zawierający rezydentne limfocyty T. Oceń żywotność komórek, oceniając komórki DAPI-dodatnie.

Do analizy w czasie rzeczywistym zdefiniuj przedziały czasowe i całkowity czas nagrywania.

Aby przechwycić obrazy stosu z, zacznij od głębokości poniżej oznaczonych komórek T i przechwytuj obrazy w różnych odstępach czasu.

Wykorzystaj oprogramowanie śledzące, aby porównać długość przemieszczenia komórek T i średnią prędkość w różnych regionach guza.

Rozcieńczyć wymagane przeciwciała znakowane fluorescencyjnie i fluorescencyjny barwnik jądrowy, DAPI, do wymaganych stężeń końcowych w pożywce RPMI wolnej od czerwieni fenolowej. Następnie wyjmij płytkę hodowlaną z inkubatora i za pomocą cienkiej końcówki odessaj płyn z podkładek ze stali nierdzewnej.

Teraz, nie dotykając plasterka, dodaj 40 mikrolitrów rozcieńczonych przeciwciał na każdy plasterek guza. Aby umożliwić barwienie, inkubuj płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 15 minut. Po zakończeniu etapu barwienia, za pomocą drobnych kleszczy, usuń podkładki. Następnie delikatnie wyjmij plastry i zanurz je w podłożu RPMI1640 wolnym od czerwieni fenolu na 10 sekund. Umieść plastry z powrotem na wkładkach do hodowli komórkowych i dodaj kroplę pożywki RPMI1640 bez czerwieni fenolowej na każdy plasterek. Inkubować płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 10 minut, a następnie przystąpić do obrazowania.

Na kilka godzin przed rozpoczęciem tego eksperymentu ustaw temperaturę komory grzewczej mikroskopu na 37 stopni Celsjusza, a następnie przygotuj mikroskop ustawiony do ciągłego perfuzji wycinków guza natlenionym pożywką RPMI bez czerwieni fenolowej i zasysania roztworu do kolby zbiorczej za pomocą pompy perystaltycznej.

Za pomocą cienkich kleszczyków wyjmij poplamiony plasterek z sześciodołkowej płytki i przenieś go do 35-milimetrowego plastikowego naczynia wypełnionego pożywką RPMI bez czerwieni fenolowej, a następnie umieść kotwicę plasterka na plasterku, aby go podeprzeć. Następnie umieść tę szalkę Petriego na stoliku do obrazowania mikroskopu.

Po połączeniu końcówek wlotowych i wylotowych systemu perfuzyjnego należy włączyć pompę perystaltyczną, aby umożliwić przejście natlenionego medium przez rurki perfuzyjne. Opuść obiektyw zanurzenia w wodzie do warstwy i skup się na górnej części warstwy przy świetle jasnego pola lub o odpowiedniej długości fali.

Następnie, używając odpowiednich filtrów, wizualizuj i wybierz interesujący obszar, który zawiera wszystkie fluorescencyjnie znakowane komórki zainteresowania, a mianowicie limfocyty T CD8, wyspy guzowe i komórki zrębu CD90-dodatnie. Skonfiguruj sesję obrazowania, używając odpowiedniej intensywności lasera i czasów naświetlania, aby dopasować się do jasności obserwowanych sygnałów fluorescencyjnych. Następnie ustaw grubość stosu Z, aby zobrazować w wycinku guza.

Następnie wybierz przedział czasu obrazu Z-stack i całkowity czas nagrywania, aby przechwytywać obrazy w określonych odstępach czasu. Po przechwyceniu i wyeksportowaniu obrazów fluorescencyjnych przeanalizuj migrację limfocytów T CD8 zgodnie z opisem w protokole tekstowym.

11:07

Obrazowanie całych zwierząt i techniki cytometrii przepływowej do analizy odpowiedzi limfocytów T CD8 + specyficznych dla antygenu po szczepieniu nanocząstkami

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:09

Zastosowanie technologii jednołańcuchowej MHC do badania koagonizmu w aktywacji ludzkich limfocytów T CD8 +

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:55

Monitorowanie oddychania mitochondrialnego w ludzkich pierwotnych limfocytach T różnicowanych cytokinami

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:27

Ilościowa analiza przypadkowej migracji komórek z wykorzystaniem mikroskopii wideo time-lapse

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:07

Obrazowanie migracji komórek nowotworowych w tkance glejaka za pomocą poklatkowej skaningowej mikroskopii konfokalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:21

Obrazowanie w czasie rzeczywistym dynamiki komórek szpikowych w guzach jelita ApcMin/+ za pomocą mikroskopii konfokalnej z wirującym dyskiem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:28

Obrazowanie migracji śródmiąższowej komórek T CD4 w stanie zapalnym skóry właściwej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:28

Ex vivo Obrazowanie rezydentnych limfocytów T CD8 w wycinkach ludzkiego guza płuc za pomocą mikroskopii konfokalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:16

Równoczesne badanie rekrutacji subpopulacji monocytów w warunkach przepływu in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:00

Wizualizacja, kwantyfikacja i mapowanie populacji komórek odpornościowych w mikrośrodowisku guza

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026