$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Aby wykryć autoprzeciwciała wysp trzustkowych – biomarker cukrzycy typu 1 – należy pobrać próbki surowicy ludzkiej i dodać kwas octowy w celu zahamowania składników zakłócających.
Inkubować, a następnie dodać bufor alkaliczny, aby zneutralizować kwas.
Przenieść surowicę poddaną działaniu substancji na wielodołkową płytkę zawierającą mieszaninę autoantygenów ludzkich wysp trzustkowych, w tym antygeny biotynylowane i antygeny sprzężone z rutenem, każdy w stężeniu optymalnym dla testu.
Autoprzeciwciało wysp trzustkowych w próbce dodatniej łączy antygen sprzężony rutenem z biotynylowanym antygenem wychwytującym, tworząc kompleks antygen-przeciwciało.
Przenieść mieszaninę na płytkę elektrochemiluminescencyjną pokrytą streptawidyną, wstępnie potraktowaną środkiem blokującym i wyposażoną w elektrody robocze i przeciwelektrody.
Inkubować, aby umożliwić interakcje biotynylowanego kompleksu ze związaną streptawidyną, a następnie przemyć.
Dodać bufor zawierający tripropyloaminę lub TPA.
W przyrządzie do elektrochemiluminescencji przyłożenie napięcia między elektrodami inicjuje utlenianie rutenu i TPA, generując rodniki TPA.
Rodniki TPA wzbudzają kompleksy rutenu, które emitują fotony, wracając do stanu podstawowego.
Wysoka chemiluminescencja w próbce dodatniej wskazuje na obecność autoprzeciwciał wysp trzustkowych.
Wymieszaj ludzki autoantygen wysp trzustkowych z biotyną lub znacznikiem sulfo w stosunku molowym 1:5 w probówce i przykryj probówkę folią aluminiową, ponieważ oba znaczniki są wrażliwe na światło. Następnie inkubuj probówkę przez godzinę w temperaturze pokojowej. W międzyczasie, gdy trwa inkubacja, zalać kolumnę wirową podwójnym roztworem soli fizjologicznej buforowanej fosforanami.
Następnie odwirować kolumnę z prędkością 1,000 g przez dwie minuty za każdym razem. Następnie odwirować mieszaninę znaczników autoantygenu w kolumnie wirowej pod ciśnieniem 1,000 razy g przez 2 minuty. Następnie podwielokrotność i przechowywanie tego znakowanego antygenu w temperaturze ujemnej 80 stopni Celsjusza.
Następnie użyj racjonalnego stężenia antygenu znakowanego sulfo biotyną na podstawie testu szachownicy dla buforu antygenu, aby przygotować 3 mililitry roztworu antygenu na 96-dołkową płytkę.
Następnie do każdej studzienki dodaj 4 mikrolitry surowicy i dostosuj końcową objętość do 20 mikrolitrów za pomocą 1-krotnego roztworu soli fizjologicznej buforowanej fosforanami. Następnie dodaj 20 mikrolitrów znakowanego roztworu antygenu do każdej studzienki i przykryj płytkę folią uszczelniającą, aby zapobiec przedostawaniu się światła. Następnie przenieś płytkę na shaker w temperaturze pokojowej na 2 godziny.
Gdy shaker się zatrzyma, pozostaw talerz w temperaturze 4 stopni Celsjusza w lodówce na 18 do 24 godzin. Teraz wymieszaj 15 mikrolitrów surowicy z 18 mikrolitrami 0,5 molowego kwasu octowego dla każdej próbki i inkubuj to samo w temperaturze pokojowej przez 45 minut.
Na podstawie testu szachownicy należy użyć racjonalnego stężenia antygenu znakowanego sulfo biotyną do przygotowania roztworu antygenu.
Następnie podwielokrotność 35 mikrolitrów buforu antygenowego do każdej studzienki nowej płytki PCR. Tuż przed zakończeniem chóru inkubacji mieszaniny surowicy, dodać 3,8 mikrolitra 1 molowego buforu Tris o pH 9 wzdłuż boku każdej studzienki na płytce antygenowej.
Po zakończeniu inkubacji szybko przenieś 25 mikrolitrów surowicy nasączonej kwasem octowym do każdego dołka płytki antygenowej i wymieszaj roztwór. Następnie przykryj płytkę PCR folią uszczelniającą, aby uniknąć światła, i umieść na shakerze w temperaturze pokojowej na 2 godziny. Po zakończeniu przenieś płytkę w temperaturze 4 stopni Celsjusza do lodówki i inkubuj przez 18 do 24 godzin.
Wyjmij płytkę streptawidyny z lodówki w temperaturze 4 stopni Celsjusza i pozwól jej osiągnąć temperaturę pokojową. Gdy płytka streptawidyny osiągnie temperaturę pokojową, dodaj 150 mikrolitrów 3% blokera A do każdej studzienki, przykryj płytkę PCR folią uszczelniającą i inkubuj w lodówce przez noc.
Następnego dnia wyjmij płytkę ze streptawidyną z lodówki i usuń bufor z dołków. Następnie osusz talerz, kładąc go do góry nogami na suchych ręcznikach papierowych, aby pozostały bufor nasiąkł. Następnie dodaj 150 mikrolitrów 1-krotnego buforu PBST, aby umyć studzienkę przez trzy kolejne płukania.
Następnie przenieś 30 mikrolitrów inkubacji antygenu surowicy do każdej studzienki płytki streptawidyny i przykryj płytkę folią, aby uniknąć światła. Następnie przenieś płytkę na shaker w temperaturze pokojowej na godzinę. Po godzinie wyrzucić inkubat antygenu surowicy z płytki i dodać 150 mikrolitrów 1-krotnego buforu PBST, aby trzykrotnie przemyć studzienkę. Po zakończeniu mycia dodaj 150 mikrolitrów buforu odczytowego do każdej studzienki, aby odczytać na czytniku płytkowym.