$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Zacznij od rurki przenoszącej cząstki związane z błoną komórkową, zwane pęcherzykami zewnątrzkomórkowymi lub EV, które wykazują unikalny skład antygenowy.
Wprowadzenie nanocząstek magnetycznych, MNP, zawierających przeciwciała wychwytujące sprzężone z fluorescencyjnie znakowanymi fragmentami Fab.
Inkubować w celu ułatwienia interakcji między MNP ze specyficznymi antygenami EV, tworząc kompleksy MNP-EV.
Dodaj immunoglobulinę G, aby zablokować miejsca wiązania Fc, a następnie wprowadź znakowane fluorescencyjnie przeciwciała wykrywające, aby zabarwić inne antygeny na wychwyconych cząstkach.
Załaduj tę mieszaninę na wstępnie umytą kolumnę magnetyczną umieszczoną w separatorze magnetycznym.
Pole magnetyczne zatrzymuje cząstki wychwycone przez MNP w kolumnie. Wymień bufor w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał.
Wyjmij kolumnę z separatora magnetycznego, wymyj cząstki wychwycone przez MNP za pomocą buforu i utrwal je, aby zachować ich integralność strukturalną.
Analizuj wychwycone immunologicznie cząstki za pomocą cytometrii przepływowej; wyraźne sygnały fluorescencyjne z barwionych antygenów korelują z unikalnymi cechami antygenowymi EV.
Zacznij od połączenia 60 mikrolitrów MNP na warunek i 5 mikrolitrów znakowanych fragmentów Fab specyficznych dla izotypu przeciwciała wychwytującego będące przedmiotem zainteresowania w 1,5-mililitrowej probówce do mikrowirówki. Inkubować roztwór w temperaturze pokojowej przez 30 minut z ciągłym mieszaniem. Następnie wstępnie zwilż koncentrator 100k 300 mikrolitrami PBS i odwiruj koncentrator w mikrowirówce.
Pod koniec wirowania oczyść oznakowane kompleksy na kolumnie 100k, a następnie wykonaj kolejne wirowanie, ponownie zawieszając granulki w 200 mikrolitrach świeżego PBS. Aby wychwycić interesujące cząstki, należy inkubować MNP znakowane przeciwciałami z cząstką będącą przedmiotem zainteresowania przez odpowiedni okres inkubacji i temperaturę.
Następnie zablokuj wszelkie niespecyficzne wiązania FC z odpowiednimi gatunkami przeciwciał IgG, delikatnie wiruj i inkubuj roztwór cząstek przez 3 do 5 minut w temperaturze pokojowej. Następnie dodać zalecane przez producenta stężenie każdego przeciwciała wykrywającego do cząstek lub przeciwciała kontrolne izotypu do próbki kontrolnej izotypu przez dodatkowe 20 minut inkubacji w temperaturze pokojowej.
Aby oddzielić cząstki wychwycone przez MNP od niezwiązanego przeciwciała, najpierw umieść kolumnę separacji magnetycznej w magnesie separatora i wstępnie zwilż kolumnę 500 mikrolitrami buforu do mycia. Pozwolić, aby bufor płuczący przepłynął przez kolumnę. Następnie dodaj kompleksy cząstek MNP do kolumny, zbierając przepływ do pojemnika na odpady.
Gdy cały złożony roztwór przejdzie przez kolumnę, przemyj kolumnę trzykrotnie 500 mikrolitrami buforu do mycia. Następnie przenieś kolumnę do rurki o wymiarach 12 na 75 milimetrów. Po trzech minutach dodaj 200 mikrolitrów PBS, pozwalając kulkom wymyć się grawitacyjnie.
Gdy cały PBS przejdzie przez kolumnę, dodaj 200 mikrolitrów świeżego PBS do probówki i utrwal cząstki za pomocą 200 mikrolitrów 4% paraformaldehydu. Następnie załaduj PBS z filtrem 0,22 mikrona do cytometru przepływowego i dostosuj napięcie PMT na cytometrze, aż przefiltrowany PBS pokaże zero lub bardzo niewiele zdarzeń. Następnie uruchom cząstki wychwycone przez MNP przy niskim przepływie z 0,04-mikronowym filtrem liniowym dla płynu osłonowego umieszczonym szeregowo za standardowym filtrem osłonowym 0,2 mikrona, aby jeszcze bardziej wyeliminować wszelkie fałszywe zdarzenia.