JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 wyświetleń • 5:27 min • July 8th, 2025
Pobrać trzy próbki kultur neuronalnych hipokampa na szkiełkach nakrywkowych.
Wprowadź przeciwciała pierwszorzędowe, aby oznaczyć receptory glutaminianu o ekspresji powierzchniowej.
Dodać kondycjonowaną pożywkę do drugiej i trzeciej próbki, aby wywołać endocytozę receptorów związanych z przeciwciałami.
W trzeciej próbce dodaj fragmenty Fab, aby zablokować epitopy na przeciwciałach nieendocytozowanych.
Wprowadź inhibitor, aby zablokować endocytozę receptora, jednocześnie umożliwiając recykling receptora na powierzchnię.
We wszystkich próbkach utrwal komórki i dodaj roztwór blokujący, aby zapobiec niespecyficznemu etykietowaniu.
Wprowadź przeciwciała drugorzędowe znakowane fluoroforem, aby oznaczyć przeciwciała pierwszorzędowe na receptorach związanych powierzchniowo, w tym przeciwciała pochodzące z recyklingu.
Przepuszczalność błon komórkowych.
Ponownie dodać przeciwciało pierwszorzędowe do pierwszej próbki, aby oznaczyć istniejące wcześniej receptory endocytozowane.
Wprowadź różne przeciwciała drugorzędowe znakowane fluoroforem do wszystkich próbek, aby oznaczyć przeciwciała pierwszorzędowe związane z endocytozowanym receptorem, rozróżniając receptory endocytozowane i związane powierzchniowo.
Za pomocą mikroskopu konfokalnego określ ilościowo receptory wyrażane powierzchniowo, endocytozowane i poddane recyklingowi w różnych terapiach.
Aby rozpocząć tę procedurę, przenieś szkiełka nakrywkowe stroną komórkową do góry na tacę pokrytą folią parafinową, aby zaoszczędzić odczynniki i ułatwić manipulację. Przechowuj i utrzymuj kondycjonowane podłoże w temperaturze 37 stopni Celsjusza na etapie inkubacji i mycia.
Inkubować komórki z pierwszorzędowymi przeciwciałami rozcieńczonymi w kondycjonowanym podłożu w temperaturze pokojowej przez 15 minut. Następnie za pomocą pipety próżniowej ostrożnie odessać pożywkę zawierającą przeciwciała i trzykrotnie umyć komórki kondycjonowaną pożywką.
Jeśli badasz ekspresję receptora powierzchniowego w porównaniu z ekspresją receptora wewnątrzkomórkowego, utrwal komórki za pomocą paraformaldehydu po tym kroku, jak opisano w protokole tekstowym. Utrzymuj komórki w kondycjonowanym podłożu bez przeciwciał i zwróć je do inkubatora w temperaturze 37 stopni Celsjusza, aby umożliwić internalizację. Jeśli badasz proces internalizacji, utrwal komórki paraformaldehydem po tym kroku, zgodnie z opisem w protokole tekstowym.
Aby zablokować epitopy na pierwotnym przeciwciałie przyłączonym do receptorów o ekspresji powierzchniowej, które nie zostały zinternalizowane, inkubuj komórki z niesprzężonymi fragmentami przeciwciała anty-IgG Fab rozcieńczonymi w kondycjonowanych pożywkach przez 20 minut w temperaturze pokojowej. Następnie umyj komórki trzykrotnie kondycjonowanym podłożem. Inkubować umyte studzienki z kondycjonowaną pożywką zawierającą 80 mikromolowych dynasorów w temperaturze 37 stopni Celsjusza, aby umożliwić recykling zinternalizowanych receptorów.
Po zakończeniu modyfikacji na żywych komórkach, umyj komórki raz PBS+. Dodaj do komórek roztwór 4% paraformaldehydu i 4% sacharozy w PBS i inkubuj w dygestorium w temperaturze pokojowej przez 7 do 8 minut, aby utrwalić komórki. Następnie umyj komórki trzykrotnie zwykłym PBS. Dodaj do komórek roztwór 10% normalnej surowicy koziej w PBS i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 30 minut, aby zablokować niespecyficzne miejsca wiązania.
Następnie inkubuj komórki z fluorescencyjnie znakowanym przeciwciałem drugorzędowym rozcieńczonym w 3% NGS w PBS w temperaturze pokojowej przez jedną godzinę, aby znakować receptory znakowane pierwszorzędowymi przeciwciałami. Następnie umyj komórki trzykrotnie PBS.
Aby rozpocząć znakowanie receptorów wewnątrzkomórkowych, dodaj roztwór 0,25% Triton-X do PBS i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 5 do 10 minut, aby przepuszczalność komórek. Następnie blokuj 10% NGS w temperaturze pokojowej przez 30 minut. Jeśli badasz powierzchnię w porównaniu z całością, inkubuj komórki z tym samym pierwotnym przeciwciałem, które użyto wcześniej, rozcieńczonym w 3% NGS w PBS w temperaturze pokojowej przez jedną godzinę, aby oznaczyć receptory wewnątrzkomórkowe.
Następnie umyj komórki trzykrotnie PBS. Oznaczyć drugim fluorescencyjnie znakowanym przeciwciałem drugorzędowym rozcieńczonym w 3% NGS w PBS w temperaturze pokojowej przez jedną godzinę. Następnie umyj komórki trzykrotnie PBS. Najpierw delikatnie umieść szkiełka nakrywkowe, stroną z komórkami do dołu, na 12 do 15 mikrolitrach odpowiedniego nośnika montażowego do zamontowania komórek. Następnie zobrazuj komórki pod odpowiednim mikroskopem konfokalnym i przeanalizuj komórki zgodnie z opisem w protokole tekstowym.
Niniejszy artykuł opisuje protokół badania dynamiki receptorów glutaminianu w kulturach neuronów hipokampa. Szczegółowo omówiono metody znakowania, utrwalania i ilościowego oznaczania receptorów eksponowanych na powierzchni, endocytowanych oraz recyklowanych przy użyciu mikroskopii konfokalnej.
Metoda ta umożliwia precyzyjne rozróżnienie populacji receptorów glutaminianu znajdujących się na powierzchni komórki od tych zinternalizowanych, co wspiera mechanistyczną redukcję ryzyka w walidacji celów terapeutycznych w zaburzeniach OUN. Poprzez kwantyfikację dynamiki transportu receptorów zapewnia wiarygodność predykcyjną w ocenie wpływu związków na funkcję synaptyczną i neuronalne szlaki sygnalizacyjne. Podejście to wspomaga wczesne etapy odkrywania leków, wyjaśniając zachowanie receptorów pod wpływem perturbacji farmakologicznych lub genetycznych istotnych dla wskazań neuropsychiatrycznych.
Technika ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków, od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego, dostarczając wglądu w mechanizmy, które pomagają w podejmowaniu decyzji dotyczących dalszego rozwoju związku.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026