Technika in vitro do badania transportu receptorów glutaminianu w neuronach hipokampa

0 wyświetleń5:27 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pobrać trzy próbki kultur neuronalnych hipokampa na szkiełkach nakrywkowych.

Wprowadź przeciwciała pierwszorzędowe, aby oznaczyć receptory glutaminianu o ekspresji powierzchniowej.

Dodać kondycjonowaną pożywkę do drugiej i trzeciej próbki, aby wywołać endocytozę receptorów związanych z przeciwciałami.

W trzeciej próbce dodaj fragmenty Fab, aby zablokować epitopy na przeciwciałach nieendocytozowanych.

Wprowadź inhibitor, aby zablokować endocytozę receptora, jednocześnie umożliwiając recykling receptora na powierzchnię.

We wszystkich próbkach utrwal komórki i dodaj roztwór blokujący, aby zapobiec niespecyficznemu etykietowaniu.

Wprowadź przeciwciała drugorzędowe znakowane fluoroforem, aby oznaczyć przeciwciała pierwszorzędowe na receptorach związanych powierzchniowo, w tym przeciwciała pochodzące z recyklingu.

Przepuszczalność błon komórkowych.

Ponownie dodać przeciwciało pierwszorzędowe do pierwszej próbki, aby oznaczyć istniejące wcześniej receptory endocytozowane.

Wprowadź różne przeciwciała drugorzędowe znakowane fluoroforem do wszystkich próbek, aby oznaczyć przeciwciała pierwszorzędowe związane z endocytozowanym receptorem, rozróżniając receptory endocytozowane i związane powierzchniowo.

Za pomocą mikroskopu konfokalnego określ ilościowo receptory wyrażane powierzchniowo, endocytozowane i poddane recyklingowi w różnych terapiach.

Aby rozpocząć tę procedurę, przenieś szkiełka nakrywkowe stroną komórkową do góry na tacę pokrytą folią parafinową, aby zaoszczędzić odczynniki i ułatwić manipulację. Przechowuj i utrzymuj kondycjonowane podłoże w temperaturze 37 stopni Celsjusza na etapie inkubacji i mycia.

Inkubować komórki z pierwszorzędowymi przeciwciałami rozcieńczonymi w kondycjonowanym podłożu w temperaturze pokojowej przez 15 minut. Następnie za pomocą pipety próżniowej ostrożnie odessać pożywkę zawierającą przeciwciała i trzykrotnie umyć komórki kondycjonowaną pożywką.

Jeśli badasz ekspresję receptora powierzchniowego w porównaniu z ekspresją receptora wewnątrzkomórkowego, utrwal komórki za pomocą paraformaldehydu po tym kroku, jak opisano w protokole tekstowym. Utrzymuj komórki w kondycjonowanym podłożu bez przeciwciał i zwróć je do inkubatora w temperaturze 37 stopni Celsjusza, aby umożliwić internalizację. Jeśli badasz proces internalizacji, utrwal komórki paraformaldehydem po tym kroku, zgodnie z opisem w protokole tekstowym.

Aby zablokować epitopy na pierwotnym przeciwciałie przyłączonym do receptorów o ekspresji powierzchniowej, które nie zostały zinternalizowane, inkubuj komórki z niesprzężonymi fragmentami przeciwciała anty-IgG Fab rozcieńczonymi w kondycjonowanych pożywkach przez 20 minut w temperaturze pokojowej. Następnie umyj komórki trzykrotnie kondycjonowanym podłożem. Inkubować umyte studzienki z kondycjonowaną pożywką zawierającą 80 mikromolowych dynasorów w temperaturze 37 stopni Celsjusza, aby umożliwić recykling zinternalizowanych receptorów.

Po zakończeniu modyfikacji na żywych komórkach, umyj komórki raz PBS+. Dodaj do komórek roztwór 4% paraformaldehydu i 4% sacharozy w PBS i inkubuj w dygestorium w temperaturze pokojowej przez 7 do 8 minut, aby utrwalić komórki. Następnie umyj komórki trzykrotnie zwykłym PBS. Dodaj do komórek roztwór 10% normalnej surowicy koziej w PBS i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 30 minut, aby zablokować niespecyficzne miejsca wiązania.

Następnie inkubuj komórki z fluorescencyjnie znakowanym przeciwciałem drugorzędowym rozcieńczonym w 3% NGS w PBS w temperaturze pokojowej przez jedną godzinę, aby znakować receptory znakowane pierwszorzędowymi przeciwciałami. Następnie umyj komórki trzykrotnie PBS.

Aby rozpocząć znakowanie receptorów wewnątrzkomórkowych, dodaj roztwór 0,25% Triton-X do PBS i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 5 do 10 minut, aby przepuszczalność komórek. Następnie blokuj 10% NGS w temperaturze pokojowej przez 30 minut. Jeśli badasz powierzchnię w porównaniu z całością, inkubuj komórki z tym samym pierwotnym przeciwciałem, które użyto wcześniej, rozcieńczonym w 3% NGS w PBS w temperaturze pokojowej przez jedną godzinę, aby oznaczyć receptory wewnątrzkomórkowe.

Następnie umyj komórki trzykrotnie PBS. Oznaczyć drugim fluorescencyjnie znakowanym przeciwciałem drugorzędowym rozcieńczonym w 3% NGS w PBS w temperaturze pokojowej przez jedną godzinę. Następnie umyj komórki trzykrotnie PBS. Najpierw delikatnie umieść szkiełka nakrywkowe, stroną z komórkami do dołu, na 12 do 15 mikrolitrach odpowiedniego nośnika montażowego do zamontowania komórek. Następnie zobrazuj komórki pod odpowiednim mikroskopem konfokalnym i przeanalizuj komórki zgodnie z opisem w protokole tekstowym.

11:34

Znakowanie mysich limfocytów za pomocą receptora przeciwciał Cu 64w celu transportu komórek in vivo za pomocą PET / CT

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:34

Test o wysokiej zawartości do monitorowania transportu receptora AMPA

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:19

Śledzenie transportu limfocytów T indukowanych przez bispecyficzne przeciwciała przy użyciu ludzkich limfocytów T transdukowanych lucyferazą

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:58

Dyfuzja boczna i egzocytoza białek błonowych w hodowlach neuronów oceniane za pomocą metody odzyskiwania fluorescencji oraz fotowybielania z utratą fluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:57

Używanie znacznika miejsca wiązania α-bungarotoksyny do badania lokalizacji i transportu błony receptora GABA A

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:49

Połączone znakowanie immunologiczne repliki optogenetycznej i zamrażalniczo-łamliwej w celu zbadania specyficznego dla danych wejściowych rozmieszczenia receptorów glutaminianu w ciele migdałowatym myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:46

Wykorzystanie bioczujników opartych na enzymach do pomiaru toniku i glutaminianu fazowego w mysich modelach choroby Alzheimera

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:30

Pomiar endocytozy pęcherzyków synaptycznych w hodowanych neuronach hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:48

Wysokoprzepustowy test strumienia wapnia do badania receptorów NMDA z wrażliwością na glicynę/D-serynę i glutaminian

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:13

Podejście do karmienia przeciwciałami w celu zbadania transportu receptora glutaminianu w zdysocjowanych pierwotnych kulturach hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026