$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weź mieloną mysią tkankę płucną do buforu do trawienia i inkubuj w temperaturze fizjologicznej.
Enzymy buforowe rozkładają macierz tkankową, rozluźniając komórki.
Przeprowadzić rozcieranie w celu dysocjacji masy komórkowej i przefiltrować zawiesinę za pomocą sitka w celu wyizolowania pojedynczych komórek.
Odwirować w celu usunięcia supernatantu z resztkami tkanki. Inkubować komórki z buforem do lizy w celu lizy czerwonych krwinek.
Odwirować w celu odrzucenia supernatantu zawierającego szczątki komórkowe. Ponownie zawieś komórki i przenieś je na mikropłytkę.
Dodaj przeciwciała, aby zablokować receptory Fc, zapobiegając barwieniu tła.
Wprowadź znakowany fluoroforem koktajl przeciwciał ukierunkowany na specyficzne markery powierzchniowe na wrodzonych komórkach odpornościowych - monocytach, makrofagach, komórkach dendrytycznych, komórkach NK, neutrofilach, eozynofilach i adaptacyjnych komórkach odpornościowych - limfocytach B i T.
Napraw i przepuszczalność komórek. Dodaj przeciwciała znakowane fluoroforem specyficzne dla markera wewnątrzkomórkowego na monocytach, makrofagach, komórkach dendrytycznych i eozynofilach.
Za pomocą cytometrii przepływowej sklasyfikuj znakowane komórki odpornościowe.
Przenieś płuco na szalkę Petriego. Zmiel go za pomocą dwóch drobnych skalpeli, a następnie umieść w stożkowej tubie o pojemności 50 mililitrów. Dodaj 5 mililitrów buforu wytrawiającego, aby umyć talerz. Zabezpiecz pokrywę probówki i traw płuca przez 30 minut na wytrząsarce orbitalnej z prędkością 150 obrotów na minutę w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Zatrzymaj reakcję, dodając 10 mililitrów zimnego buforu BSA.
Po strawieniu wymieszaj i rozpuść kawałki płuc za pomocą igły o rozmiarze 18G. Umieść sitko filtrujące o średnicy 70 mikrometrów na nowej stożkowej rurce o pojemności 50 mililitrów i przenieś strawioną mieszaninę płuc do sitka.
Użyj gumowej strony 10-mililitrowego tłoka strzykawki, aby rozbić pozostałe kawałki płuc na filtrze i przemyć go buforem BSA. Odwirować zawiesinę jednokomórkową o masie 350 g przez 8 minut w temperaturze 7 stopni Celsjusza. Odrzucić supernatant i ponownie zawiesić komórki w 1 mililitrze buforu do lizy ACK. Wymieszaj zawiesinę za pomocą pipety o pojemności 1 mililitra i inkubuj przez 90 sekund w temperaturze pokojowej.
Do mieszaniny reakcyjnej dodać 10 mililitrów zimnego buforu BSA i odwirować przy 350 g przez 7 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Odrzucić supernatant. Zawiesić osad w buforze barwiącym i policzyć komórki za pomocą hemocytometru. Ponownie zawiesić komórki w stężeniu 5 milionów komórek na mililitr w celu barwienia powierzchni.
Przenieś 1 milion komórek w 200 mikrolitrach na studzienkę do 96-dołkowej płytki i odwiruj płytkę przy 350 g przez 7 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Przygotować roztwór blokowy cytometrii przepływowej, rozcieńczając przeciwciało anty-16/32 w buforze barwiącym.
Zawiesić komórki w 50 mikrolitrach roztworu blokowego cytometrii przepływowej. Inkubować zawiesinę przez 15 do 20 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza lub na lodzie. Następnie dodaj 150 mikrolitrów buforu barwiącego do płytki i odwiruj go w 350 g przez 5 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza.
Przygotować powierzchniowy roztwór przeciwciał, rozcieńczając przeciwciała powierzchniowe w buforze barwiącym. Ponownie zawiesić komórki w 50 mikrolitrach powierzchniowego roztworu przeciwciał i inkubować płytkę w temperaturze 4 stopni Celsjusza w ciemności. Następnie dwukrotnie umyj komórki buforem barwiącym.
Przygotować bufor do utrwalania i przepuszczalności, mieszając trzy części rozcieńczalnika do utrwalania i przepuszczalności oraz jedną część buforu barwiącego. Ponownie zawiesić komórki w 50 mikrolitrach wstępnie przygotowanego buforu na dołek 96-dołkowej płytki i inkubować je przez 20 do 25 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza w ciemności.
Rozcieńczyć bufor przepuszczalności oczyszczoną wodą dejonizowaną, aby przygotować jednorazowy bufor przepuszczalny i użyć go do przemycia komórek. Przygotować wewnątrzkomórkowy roztwór przeciwciała, rozcieńczając go 1 mililitrem buforu przepuszczalnego. Ponownie zawiesić komórki w 50 mikrolitrach rozcieńczonego wewnątrzkomórkowego roztworu przeciwciała na dołek 96-dołkowej płytki i inkubować przez 40 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza w ciemności.
Przemyć komórki buforem do permeabilizacji, a następnie buforem barwiącym. Po ostatnim myciu ponownie zawieś komórki w 200 mikrolitrach buforu barwiącego. Pobrać co najmniej 1,5 miliona komórek na próbkę na cytometrze przepływowym.