Testy do jakościowej i ilościowej oceny stężeń glukozy w moczu myszy

0 wyświetleń4:42 min • January 15th, 2026

Weź kroplę świeżego moczu myszy i zanurz pasek wykrywający glukozę zawierający oksydazę glukozową, peroksydazę i chromogen.

Oksydaza glukozowa utlenia glukozę w moczu, tworząc glukonolakton i nadtlenek wodoru.

Ponadto peroksydaza wykorzystuje nadtlenek wodoru do katalizowania utleniania chromogenu, tworząc kolorowy produkt o intensywności proporcjonalnej do stężenia glukozy w moczu.

Porównaj kolor z tabelą referencyjną paska, aby uzyskać jakościową ocenę stężenia glukozy w moczu.

Do ilościowego pomiaru stężenia glukozy w moczu należy pobrać płytkę wielodołkową z wzorcami stężenia glukozy i próbką moczu myszy pobraną w określonym czasie.

Dodać mieszaninę testową zawierającą oksydazę glukozową, peroksydazę i odczynniki sprzęgające wskaźniki.

Oksydaza glukozowa ułatwia utlenianie glukozy, tworząc glukonolakton i nadtlenek wodoru. Peroksydaza katalizuje reakcję między odczynnikami sprzęgającymi a nadtlenkiem wodoru, tworząc produkt o różowym zabarwieniu.

Za pomocą czytnika mikropłytek zmierz absorbancję kolorowego produktu.

Za pomocą wygenerowanej krzywej wzorcowej glukozy określ stężenie glukozy w moczu.

Zacznij od umieszczenia kawałka czystego parafilmu na płaskiej powierzchni. Delikatnie podnieś mysz za ogon i połóż ją na parafilmie.

Przytrzymaj mysz za kark za pomocą kciuka i palca wskazującego, powodując oddawanie moczu przez mysz w odpowiedzi na stres. Poczekaj, aż kropla moczu spadnie na powierzchnię parafilmu, a następnie włóż mysz z powrotem do klatki.

Zanurz końcówkę odczynnika paska do wykrywania glukozy w kropli świeżego moczu. Natychmiast usuń pasek i połóż go płasko na powierzchni kolorową stroną do góry. Następnie odczekaj co najmniej 30 sekund, aż kolor w pełni rozwinie się na pasku. Porównaj opracowany kolor z tabelą referencyjną dostarczoną przez producenta.

Zmontuj klatkę metaboliczną zgodnie z instrukcjami producenta i napełnij zestaw paszy sproszkowaną karmą, a następnie przymocuj ją do odpowiedniej metalowej wypustki w górnej komorze.

Przymocuj wspornik butelki z wodą do pozostałej metalowej wypustki w górnej komorze. Napełnij pustą butelkę na wodę i wsuń ją do wspornika butelki, upewniając się, że rurka sipper znajduje się w otworze.

Umieść pojedynczą mysz w klatce metabolicznej i przykryj ją pokrywką, upewniając się, że pokrywa klatki jest prawidłowo dopasowana. Umieść probówkę do zbierania moczu i rurkę do zbierania kału w odpowiednich miejscach w dolnej podłodze komory.

Po 24 godzinach wyjmij probówkę do zbierania moczu i wykonaj test glukozy w celu określenia stężenia glukozy w moczu. Jeśli test glukozy nie zostanie wykonany tego samego dnia, zamroź próbkę moczu w zamrażarce o temperaturze minus 80 stopni Celsjusza.

Jeśli używasz zamrożonej próbki moczu, najpierw ją rozmroź. Przygotuj osiem wzorców w zakresie od 25 do 0 miligramów na decylitr, zgodnie ze wskazówkami zestawu testowego.

Przygotuj standardowe studzienki i studzienki na próbki moczu na 96-dołkowej płytce, wszystkie w dwóch egzemplarzach, zgodnie z instrukcją zestawu. Rozpocznij reakcję, dodając zalecaną ilość mieszaniny enzymów do wszystkich studzienek. Przykryj płytkę i pozwól jej inkubować przez 10 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Następnie odczytaj absorbancję przy 500 do 520 nanometrach za pomocą czytnika płytek.

Przeanalizuj dane zgodnie z instrukcjami zestawu testowego i wykreśl absorbancję każdego wzorca w funkcji stężenia glukozy. Wykorzystaj ten wykres, aby określić stężenie glukozy w 24-godzinnej próbce moczu. Jeśli stężenie moczu wykracza poza standardowy zakres, rozcieńczyć próbkę moczu.

07:07

Określanie kinetyki metabolizmu glukozy za pomocą 18F-FDG Micro-PET/CT

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:30

Dootrzewnowy test tolerancji glukozy, pomiar czynności płuc i zespolenie płuc w celu zbadania wpływu otyłości i upośledzonego metabolizmu na wyniki płucne

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:54

Wykorzystanie kombinacji kalorymetrii pośredniej, termografii w podczerwieni i poziomu glukozy we krwi do pomiaru termogenezy brunatnej tkanki tłuszczowej u ludzi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:23

Doustny test tolerancji glukozy (OGTT): pomiar metabolizmu glukozy u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:21

Ocena wpływu ciągłego wlewu leku do mózgu myszy na obwodowy poziom glukozy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:07

Wysokoprzepustowa metoda pomiaru współczynnika filtracji kłębuszkowej u świadomych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:40

Proste i wspomagane komputerowo testy węchowe dla myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:13

Badanie metabolizmu glukozy in vivo u myszy karmionych dietą wysokotłuszczową przy użyciu doustnego testu tolerancji glukozy (OGTT) i testu tolerancji insuliny (ITT)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:16

Ocena czynności nerek w mysich modelach choroby kłębuszków nerkowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:16

Bardzo czuły pomiar przepuszczalności kłębuszków nerkowych u myszy z izotiocyjanianem fluoresceiny i polisarozą 70

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026