JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 wyświetleń • 4:31 min • July 8th, 2025
Umieść znieczulonego szczura biorcę z ogoloną tylną kończyną na ciepłej podkładce pod mikroskopem preparacyjnym
.Naciąć skórę i rozciąć powięź, odsłaniając kompleks ścięgna Achillesa.
Usuń ścięgno podeszwowe i wytnij mały segment ze ścięgna Achillesa, tworząc zmianę.
Zszyj nacięcie i pozwól szczurowi dojść do siebie.
Pobrać pełną krew od genetycznie innego szczura dawcy, zmieszaną z antykoagulantem.
Wirować w celu uzyskania dolnej fazy czerwonych krwinek i górnej fazy osocza bogatopłytkowego lub PRP.
Przenieś PRP do probówki i odwiruj płytki krwi. Częściowo usunąć supernatant i ponownie zawiesić płytki krwi w celu uzyskania skoncentrowanego PRP.
Dodać chlorek wapnia i inkubować w celu wywołania aktywacji płytek krwi. Następnie należy wstrzyknąć aktywowane płytki krwi w miejsce zszycia biorcy.
Aktywowane płytki krwi uwalniają specyficzne cytokiny i czynniki wzrostu, które indukują naprawę ścięgien w miejscu uszkodzenia.
Zacznij od zważenia i kolczykowania uszu szczura. Po potwierdzeniu odpowiedniego poziomu sedacji poprzez uszczypnięcie palca u nogi, nałóż krople wody na rogówkę zwierzęcia i usuń włosy z lewej kończyny tylnej. Zdezynfekuj odsłoniętą skórę roztworem izobetadyny w rozcieńczeniu 1 do 10 i umieść zwierzę na poduszce grzewczej o temperaturze 20 stopni Celsjusza pod mikroskopem preparacyjnym.
W pozycji bocznej z lewą tylną kończyną w pozycji górnej, chwyć lewą łapę tylnej kończyny kleszczami i wykonaj 20 do 25-milimetrowe boczne nacięcie skóry wokół ścięgna Achillesa za pomocą cienkich nożyczek. Wypreparuj powięź, aby odsłonić kompleks ścięgna Achillesa i usuń ścięgno podeszwowe.
Przetnij ścięgno Achillesa poprzecznie 5 milimetrów proksymalnie do przyczepu kości piętowej i usuń część o długości 5 milimetrów. Następnie użyj wchłanialnej przędzy w ciągłych szwach, aby zamknąć powięź i skórę, a następnie umieść szczura pod źródłem ciepła z monitorowaniem aż do pełnego wyzdrowienia. Podczas gdy zwierzęta biorcy dochodzą do siebie, należy pobrać 20 mililitrów pełnej krwi z serca jednego dawcy na zwierzę doświadczalne do pojedynczych probówek zawierających 3,2% buforowanego cytrynianu sodu.
Aby uzyskać osocze bogatopłytkowe, odwiruj krew i użyj plastikowej pipety transferowej, aby ostrożnie pobrać górną fazę zawierającą PRP do drugiej plastikowej probówki. Określ objętość pobranego PRP i zmierz liczbę płytek krwi na analizatorze hematologicznym.
Ponownie odwirować PRP i ostrożnie przenieść supernatant do nowej plastikowej probówki. Pozostała objętość w probówce PRP powinna wynosić około 2/3 objętości wymaganej do uzyskania 2,5 x 106 płytek krwi na mikrolitr. Następnie delikatnie zawiesić osad płytek krwi za pomocą pipetowania. Zmierzyć liczbę płytek krwi w tym skoncentrowanym osoczu bogatopłytkowym, dodając z powrotem odpowiednią objętość autologicznego osocza ubogiego w płytki krwi, aby w razie potrzeby osiągnąć stężenie docelowe.
Aktywuj płytki krwi za pomocą 50 mikrolitrów chlorku wapnia na mililitr PRP przez około 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Następnie załaduj płytki krwi do 1-mililitrowej strzykawki wyposażonej w igłę o rozmiarze 21 i wstrzyknij 50 mikrolitrów płytek krwi bezpośrednio w miejsce szwu każdego zwierzęcia.
Niniejsze badanie analizuje wpływ aktywnego osocza bogatopłytkowego (PRP) na regenerację ścięgna w modelu szczurzym. Metodyka obejmuje procedury chirurgiczne w celu wywołania uszkodzenia ścięgna oraz późniejsze zastosowanie aktywnego PRP w celu stymulacji gojenia.
Ten model przedkliniczny umożliwia ewaluację mechanistyczną preparatów biologicznych do naprawy ścięgien, wspierając walidację celów w medycynie regeneracyjnej. Poprzez ilościowe określanie uwalniania cytokin oraz wyników histologicznych, zapewnia on wiarygodność prognostyczną w celu ograniczenia ryzyka terapii opartych na PRP przed badaniami umożliwiającymi złożenie wniosku o IND. Model uszkodzenia ścięgna Achillesa u szczura zapewnia ciągłość translacyjną w ocenie zależności dawka-odpowiedź oraz czasowej dynamiki gojenia w zestandaryzowanym systemie.
Ustawia metodę w kontekście przejścia od wczesnego etapu odkrywania do fazy przedklinicznej, wspierając testowanie hipotez i optymalizację wiodących związków w biologicznych metodach naprawy ścięgien.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026