RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Zacznij od rurki ustnej zawierającej zawiesinę genetycznie przekształconych, auksotroficznych drożdży, które nie są w stanie wytworzyć uracylozasady nukleotydowej.
Włóż rurkę ustną do ust skrępowanej myszy i poprowadź ją w dół do żołądka.
Zawiesinę drożdży należy podawać bezpośrednio do żołądka, dzięki czemu ostatecznie dotrze ona do jelita cienkiego.
Jelito cienkie zawiera komórki nabłonkowe, a leżące pod nim plamy Peyera są bogate w komórki odpornościowe.
Komórki mikrofałdowania, wyspecjalizowane komórki nabłonka jelitowego w pobliżu łat Peyera, pochłaniają komórki drożdży i internalizują je w pęcherzyki.
Pęcherzyki te przemieszczają się po komórkach i uwalniają komórki drożdży do leżącego pod spodem plastra Peyera.
Wyizoluj plaster Peyera z poświęconego jelita myszy i uzyskaj jednolitą zawiesinę komórkową.
Hodować tę zawiesinę komórkową na pożywce selektywnej dla drożdży zawierającej uracyl.
Drożdże auksotroficzne wykorzystują uracyl i namnażają się, tworząc kolonie, potwierdzając dostarczanie przekształconych komórek drożdży do jelitowego układu odpornościowego myszy.
Po przygotowaniu kultur drożdży zgodnie z protokołem tekstowym użyj hemocytometru, aby określić stężenie komórek i dostosuj do 10 do dziewiątych komórek na mililitr. Granulować komórki przez odwirowanie 2,500 razy g przez trzy minuty. Następnie odlać supernatant i ponownie zawiesić komórki, dodając odpowiednią ilość sterylnej wody i delikatnie pipetując w górę iw dół.
Przymocuj odpowiednią igłę do zgłębnika na sterylnej strzykawce o pojemności 1 mililitra i załaduj próbkę drożdży, eliminując wszelkie pęcherzyki powietrza. Załaduj dodatkową strzykawkę sterylną wodą, aby kontrolować zgłębniki. Używając ręki niedominującej, podnieś mysz, którą chcesz nakłuć, a następnie palcem wskazującym i kciukiem mocno chwyć skórę wokół szyi. Wsuń ogon pod mały palec. Upewnij się, że uchwyt jest bezpieczny i uniemożliwia myszowi poruszanie głową.
Następnie delikatnie włóż igłębkę do przełyku myszy, kierując igłę wzdłuż podniebienia i tylnej części gardła, trzymając się nieco na lewo od środka. Poczekaj, aż mysz połknie gruszkę igły. Jeśli czujesz opór lub mysz sapie, delikatnie wyjmij igłę i spróbuj ponownie znaleźć przełyk.
Po tym, jak mysz połknie gruszkę igły z zgłębkiem, delikatnie naciśnij tłok strzykawki, aby podać drożdże bezpośrednio do żołądka myszy. Delikatnie wyjmij igłębkę z żołądka i przełyku myszy i włóż mysz z powrotem do klatki. Sprawdź, czy mysz oddycha i porusza się normalnie, aby upewnić się, że zgłębnik został wykonany prawidłowo.
Po poświęceniu myszy zgodnie z protokołem tekstowym, ustaw ją tak, aby brzuch był całkowicie odsłonięty i użyj 70% etanolu do spryskania okolicy brzucha. Nożyczkami wykonaj poprzeczne nacięcie przez futro i skórę. Następnie ręcznie podważ nacięcie, aby jeszcze bardziej odsłonić otrzewną, cienką błonę surowiczą, która pokrywa narządy jamy brzusznej. Delikatnie unieś otrzewną i wykonaj poprzeczne nacięcie, aby odsłonić jelita.
Następnie użyj kleszczy, aby ostrożnie odsunąć jelito cienkie od tętnic krezkowych, tłuszczu i innych tkanek. Odsłoń jelito cienkie z żołądka w lewym górnym kwadrancie brzucha myszy do jelita ślepego, dużej kieszonki tkanki jelitowej na początku jelita grubego.
Następnie wyizoluj łaty Peyera, szukając od 1 do 2 milimetrów, z grubsza okrągłych plam nieprzezroczystej tkanki wzdłuż jelita cienkiego. Następnie, za pomocą zakrzywionych nożyczek preparacyjnych, odetnij kopułę łaty Peyera, pozostawiając marginesy, aby upewnić się, że żadna z otaczających tkanek nie zostanie zebrana.
Przenieś wypreparowane plastry Peyera do kompletnego IMDM. Następnie wlej roztwór z zawieszonymi plastrami Peyera na sitko o średnicy 40 mikrometrów. Po umyciu plastrów Peyera pełnym IMDM, użyj tłoka z 1-mililitrowej strzykawki, aby delikatnie rozbić tkankę i zebrać komórki w 50-mililitrowej tubce. Granuluj napięte komórki z prędkością 1,800 obr./min przez siedem minut. Następnie poczekaj i przeanalizuj komórki zgodnie z protokołem tekstowym.
Related Videos
08:26
Related Videos
9.7K Views
10:36
Related Videos
20.3K Views
07:42
Related Videos
5.6K Views
03:05
Related Videos
120 Views
08:37
Related Videos
17.1K Views
10:39
Related Videos
13K Views
12:12
Related Videos
12.8K Views
08:12
Related Videos
12.3K Views
10:21
Related Videos
9.9K Views
12:08
Related Videos
9.5K Views