Obrazowanie transgenicznych komórek beta u myszy z niedoborem odporności i prowokacją ze splenocytami cukrzycowymi

0 wyświetleń4:16 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od powściągliwej myszy z niedoborem odporności NOD, która nie ma komórek odpornościowych i jest podatna na cukrzycę.

Tej myszy wstrzykuje się transgeniczne komórki beta trzustki, które wytwarzają insulinę i wyrażają enzymy lucyferazy.

Weź strzykawkę zawierającą wstępnie potraktowane splenocyty pochodzące od myszy z cukrzycą. Splenocyty zawierają autoreaktywne limfocyty T ze zdolnością rozpoznawania peptydów insuliny.

Podaj te splenocyty do żyły ogonowej myszy.

Splenocyty krążą i docierają do trzustki, gdzie autoreaktywne limfocyty T rozpoznają peptydy insuliny na komórkach beta i ulegają aktywacji.

Te aktywowane komórki uwalniają cząsteczki cytotoksyczne, inicjując niszczenie komórek beta poprzez autoreaktywność.

Następnie wstrzyknij substrat lucyferazy do otrzewnej myszy. Substrat dyfunduje w tym regionie i wnika do komórek beta.

W komórkach substrat oddziałuje z enzymami lucyferazy, wytwarzając luminescencję.

Korzystając z bioluminescencyjnego systemu obrazowania, rejestruj obrazy w regularnych odstępach czasu

Stopniowy spadek luminescencji wskazuje na zniszczenie transgenicznych komórek beta w wyniku autoreaktywności.

Rozgrzej ciało dorosłego biorcy, myszy NOD-scid, używając lampy grzewczej przez 5 do 10 minut, aby ukrwić żyły. Zawiesinę roztworu splenocytów przed każdym wstrzyknięciem. Dla każdej myszy pobrać do strzykawki 100 mikrolitrów wstępnie podgrzanej zawiesiny splenocytów. Upewnij się, że nie ma pęcherzyków powietrza.

Następnie umieść mysz w urządzeniu przytrzymującym, a następnie złap jej ogon ręką niedominującą. Zlokalizuj jedną z dwóch bocznych żył ogonowych. W razie potrzeby delikatnie obróć ogon. Przetrzyj ogon chusteczką dezynfekcyjną zawierającą 70% alkoholu izopropylowego.

Używając ręki dominującej, wbij igłę pod ostrym kątem w centralną część ogona. Trzymając skos igły skierowany do góry, wsuń igłę na kilka milimetrów przez skórę. Następnie delikatnie docisnąć strzykawkę, aby wstrzyknąć zawiesinę splenocytów. Nie należy dopuścić do tego, aby igła przesuwała się dalej do środka lub na zewnątrz podczas wstrzykiwania. Udane wstrzyknięcia nie powodują powstania ciśnienia wstecznego podczas wstrzyknięcia i są sygnalizowane przezroczystym lub białym przepływem krwi bezpośrednio po wstrzyknięciu.

Po wstrzyknięciu delikatnie wyjąć igłę z żyły i lekko uciskać ogon chusteczką dezynfekcyjną, aż do ustania krwawienia. Zwolnij mysz z urządzenia przytrzymującego i delikatnie przenieś ją do świeżo przygotowanej klatki. Co najmniej 5 minut przed obrazowaniem wstrzyknij mysz dootrzewnowo odpowiednią dawkę roztworu D-lucyferyny, używając 1-mililitrowej strzykawki i igły o rozmiarze 26.

Po zalogowaniu się do oprogramowania do obrazowania w panelu sterowania wybierz opcję Inicjuj. Aby automatycznie zapisać dane obrazowania, kliknij Akwizycja, a następnie Automatycznie zapisz w i utwórz odpowiednie foldery na komputerze. Po zakończeniu inicjalizacji przyrządu ustaw czas ekspozycji na jedną minutę.

Umieść mysz na przyrządzie do obrazowania w pozycji leżącej z rozłożonymi kończynami i wprowadź głowę do stożka nosowego. Delikatnie spłaszcz mysz, naciskając środek jej pleców obiema rękami, a następnie rozkładając ręce na zewnątrz i rozsuwając je. Następnie w oprogramowaniu do obrazowania wybierz opcję Pobierz i zapisz wszelkie istotne szczegóły eksperymentu.

08:37

Indukcja zapalenia jelit myszy przez adoptywny transfer efektorowych limfocytów T CD4 + CD45RB do myszy z niedoborem odporności

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:16

Przejściowa ekspresja w buraka ćwikłowym biofarmaceutycznej szczepionki kandydackiej przeciwko cukrzycy typu 1

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:31

Wysokowydajne wytwarzanie pierwotnych cytotoksycznych limfocytów T myszy specyficznych dla antygenu do testów funkcjonalnych w autoimmunologicznym modelu cukrzycy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:43

Transplantacja wysepek trzustkowych do torebki nerki u myszy z cukrzycą

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:12

Metody oceny śmierci komórek beta pośredniczonej przez cytotoksyczne limfocyty T

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:27

Przyspieszona indukcja cukrzycy typu 1 u myszy przez adoptywny transfer cukrzycowych limfocytów T CD4 +

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:09

Mysi model cukrzycy typu 2 Leprdb: izolacja wysp trzustkowych i obrazowanie 2-fotonowe żywych komórek nienaruszonych wysp trzustkowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:57

Wspomagany rusztowaniem przeszczep wysp trzustkowych w poduszce tłuszczowej najądrza myszy z cukrzycą

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:14

Pachwinowy podskórny model przeszczepu białej tkanki tłuszczowej (ISWAT) mysich wysp trzustkowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:07

Podłużne obrazowanie in vivo i kwantyfikacja przeszczepu ludzkich wysp trzustkowych i komórek gospodarza w przedniej komorze oka

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026