Generowanie pojedynczych dodatnich limfocytów T CD8 z indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych

0 wyświetleń6:08 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hodowla indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych na warstwie zasilającej komórek zrębu na matrycy żelatynowej.

Warstwa zasilająca naśladuje naturalne środowisko zewnątrzkomórkowe, kierując różnicowaniem komórek macierzystych w organoidy w kształcie kopuły zawierające hematopoetyczne komórki progenitorowe.

Dodaj enzymy, aby zdysocjować współhodowane komórki.

Przenieś komórki do świeżego naczynia pokrytego żelatyną w celu uzyskania adhezji komórek zrębu.

Zebrać nieprzylegające hematopoetyczne komórki progenitorowe w pożywce różnicującej.

Hoduj je na świeżej warstwie zasilającej, aby promować różnicowanie komórek progenitorowych w podwójnie dodatnie limfocyty T z receptorami CD4 i CD8 oraz podwójnie ujemne limfocyty T pozbawione obu receptorów.

Przenieś komórki do probówki. Inkubuj je za pomocą kulek magnetycznych zawierających przeciwciała specyficzne dla CD4, które selektywnie znakują podwójnie dodatnie limfocyty T.

Użyj separatora magnetycznego, aby wyizolować podwójnie dodatnie komórki i wyhodować je na świeżej warstwie zasilającej.

Suplement z mieszanką cytokin i przeciwciał w celu stymulacji komórek, indukując regulację w dół receptora CD4 i promując ich różnicowanie w pojedyncze komórki dodatnie CD8.

Przygotuj zżelowane naczynia OP9-delta-1 na tydzień przed wspólną hodowlą z ludzkimi IPSC. Dodaj 4 mililitry 0,1% żelatyny do trzech nowych naczyń do hodowli komórkowych i inkubuj je przez 30 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Po inkubacji odessać żelatynę i dodać 8 mililitrów pożywki OP9 do każdego naczynia. Przejście przez jedno zlejące się naczynie komórek OP9-delta-1 do trzech naczyń pokrytych żelatyną.

Po czterech dniach dodaj 10 mililitrów pożywki OP9 do każdej płytki komórek, co daje w sumie 20 mililitrów pożywki na miskę. Rozpocznij kohodowlę ludzkiego IPSC na szalkach konfluencji OP9-delta-1 siedem do ośmiu dni po pasażowaniu komórek. Odessać pożywkę z konfluentnego naczynia ludzkich IPSC i dodać 10 mililitrów pożywki OP9.

Wytnij i odłącz kolonie komórek za pomocą jednorazowego narzędzia do pasażowania komórek i przenieś od 350 do 600 grudek wyciętych kolonii na wstępnie żelowaną miskę OP9-delta-1 z 10 mililitrami świeżej pożywki OP9. Rozbujaj naczynie hodowlane na boki i od przodu do tyłu, aby zapewnić równomierne rozmieszczenie kolonii. Następnego dnia odessaj zużytą pożywkę i zastąp ją 20 mililitrami świeżej pożywki OP9.

Ludzkie skupiska IPSC hodowane wspólnie na OP9-delta-1 przez jeden dzień powinny wyglądać jak małe, okrągłe kolonie jednowarstwowe. W dniu 5 odessaj 10 mililitrów zużytej pożywki i dodaj 10 mililitrów świeżej pożywki OP9. Kolonie zaczną różnicować się w prymitywną mezodermę, która charakteryzuje się wielowarstwowym ciemnym środkiem.

Powtórz ten proces w dniu 9, w którym to momencie wielowarstwowe struktury środkowe wyewoluują w kształty przypominające kopułę. Zbierz hematopoetyczne komórki progenitorowe w 13 dniu, w którym to momencie struktury składają się z ciemnego centralnego organoidu otoczonego siecią obszarów przypominających kopułę. Odessać pożywkę i raz umyć komórki 5 mililitrami 1x fenolowego roztworu soli Hanka z wapniem i magnezem lub HBSS.

Po umyciu dodaj 250 mikrolitrów po 5,000 jednostek na mililitr kolagenazy-4 do 10 mililitrów HBSS. Dodaj mieszaninę do komórek i inkubuj je w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 45 minut. Odessać mieszaninę HBSS-kolagenaza i przemyć komórki raz 5 mililitrami PBS. Po umyciu PBS dodaj 5 mililitrów 0,25% trypsyny-EDTA i inkubuj komórki w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 20 minut.

Następnie dodaj 4 mililitry pożywki OP9 i powiąż warstwę komórek przez pipetowanie, aby uzyskać zawiesinę jednokomórkową. Przenieś zawiesinę komórek do stożkowej probówki o pojemności 50 mililitrów przez sitko o średnicy 100 mikrometrów i odwiruj probówkę przy 300 razy g i 4 stopnie Celsjusza przez 5 minut. Odessać supernatant i ponownie zawiesić komórki w 10 mililitrach pożywki OP9.

Zawiesinę komórek umieścić na nowej, zżelatynizowanej 10-centymetrowej naczyniu do hodowli komórkowych i inkubować w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 45 minut. Następnie należy zebrać wszystkie nieprzylegające komórki za pomocą delikatnego pipetowania. Przenieś zawiesinę komórkową do 50-mililitrowej stożkowej probówki przez sitko i odwiruj zgodnie z wcześniejszym opisem. Następnie odessać supernatant i ponownie zawiesić komórki w 10 mililitrach pożywki różnicowej.

Umieść zawiesinę komórek na nowej naczyniu zlewającej się OP9-delta-1. Przejdź przez komórki w dniu 16 zgodnie ze wskazówkami manuskryptu, a następnie kontynuuj przechodzenie nieprzylegających komórek co pięć do siedmiu dni. Po 35 dniach różnicowania należy wzbogacić populację komórek CD4-dodatnich o izolację kulek magnetycznych CD4 zgodnie z protokołem producenta.

Następnie ponownie zawieś komórki w pożywce OP9 i umieść 1 mililitr zawiesiny komórkowej w każdym dołku 24-dołkowej płytki z płaską płytką do hodowli tkankowej z konfluentem OP9-delta-1. Stymuluj komórki, dodając 100 jednostek międzynarodowych ludzkiej IL-2, 5 nanogramów ludzkiej IL-7, 500 nanogramów przeciwciała anty-ludzkiego CD3 i 2 mikrogramy przeciwciała anty-ludzkiego CD28 do każdej studzienki. Po czterech do siedmiu dniach można pobrać komórki do dalszej analizy.

07:37

Skuteczne różnicowanie ludzkich pluripotencjalnych komórek macierzystych w komórki wątroby

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:05

Produkcja i charakterystyka ludzkich makrofagów z pluripotencjalnych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:40

Skalowalne generowanie dojrzałych organoidów móżdżku z ludzkich pluripotencjalnych komórek macierzystych i charakterystyka za pomocą barwienia immunologicznego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:47

Ukierunkowane różnicowanie indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych w kierunku limfocytów T

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:56

Generacja myszy pochodzących z indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:03

Wytwarzanie ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych z krwi obwodowej przy użyciu wektora lentiwirusowego STEMCCA

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:43

Wydajna generacja ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych z ludzkich komórek somatycznych z wirusem Sendai

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:32

Wytwarzanie indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych z ludzkich obwodowych limfocytów T przy użyciu wirusa Sendai w warunkach wolnych od żywiciela

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:03

Wytwarzanie indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych z ludzkich limfocytów naciekających nowotwór czerniaka

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:45

Generowanie indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych bez integracji z ludzkich komórek jednojądrzastych krwi obwodowej przy użyciu wektorów episomalnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026