Różnicowanie nerwowych komórek macierzystych i progenitorowych wywołane stymulacją elektryczną

0 wyświetleń6:03 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od mikroprzepływowego chipa MOE podłączonego do zasilania elektrycznego.

Chip zawiera obszary hodowli pokryte poli-L-lizyną połączone z portami wlotowymi i wylotowymi, wraz z zamontowanymi elektrodami Ag/AgCl do połączeń elektrycznych.

Umieść chip mikroprzepływowy na grzejniku, aby uzyskać optymalne warunki wzrostu.

Przepływające nerwowe komórki macierzyste i progenitorowe lub NPC do powlekanych regionów hodowli przez wyloty.

Ogniwa oddziałują elektrostatycznie z poli-L-lizyną i przylegają do urządzenia mikroprzepływowego.

Następnie wprowadź pożywkę wzrostową zawierającą czynniki wzrostu, które ułatwiają proliferację przylegających komórek.

Zastosuj prąd elektryczny za pośrednictwem elektrod Ag/AgCl przez dłuższy czas z ciągłym dostarczaniem medium dla żywotności ogniwa.

Prąd elektryczny pobudza i aktywuje NPC, promując rozszerzenie procesów neuronalnych z ciał komórkowych.

Dodatkowo stymulacja elektryczna wyzwala różne wewnątrzkomórkowe szlaki sygnałowe.

Szlaki te sprzyjają NPC różnicowaniu się w różne komórki nerwowe, takie jak neurony, astrocyty i oligodendrocyty.

Na początek narysuj wzory dla poszczególnych warstw PMMA i taśmy dwustronnej za pomocą odpowiedniego oprogramowania. Włącz rysik laserowy na dwutlenek węgla i podłącz go do komputera osobistego. Otwórz plik wzorca projektowego za pomocą oprogramowania.

Umieść arkusze PMMA lub taśmę dwustronną na platformie rysika laserowego. Następnie skieruj laser na powierzchnię arkuszy PMMA lub taśmę dwustronną za pomocą narzędzia Autofocus. Wybierz rysik laserowy jako drukarkę. Następnie za pomocą rysika laserowego rozpocznij bezpośrednią ablację na arkuszu PMMA lub taśmie dwustronnej.

Usuń folię ochronną z arkuszy PMMA i oczyść powierzchnię za pomocą gazowego azotu. Aby połączyć ze sobą wiele warstw arkuszy PMMA, ułóż trzy kawałki 1-milimetrowych arkuszy PMMA i połącz je pod ciśnieniem 5 kilogramów na centymetr kwadratowy w spoiwa termicznym przez 30 minut w temperaturze 110 stopni Celsjusza, aby utworzyć zespół kanału przepływowego lub elektrostymulacji. Przyklej 12 sztuk adapterów do poszczególnych otworów w pierwszej warstwie zespołu chipów MOE za pomocą szybko działającego kleju cyjanoakrylowego.

Zdezynfekuj 1-milimetrowe podłoża PMMA, taśmę dwustronną i 3-milimetrowy PMMA klasy optycznej za pomocą promieniowania ultrafioletowego przez 30 minut przed montażem chipa. Przyklej 1-milimetrowe podłoża PMMA do 3-milimetrowego PMMA klasy optycznej za pomocą taśmy dwustronnej, aby zakończyć montaż PMMA. Oczyszczoną szkiełko nakrywkowe przykleić do zespołu PMMA za pomocą taśmy dwustronnej.

Uszczelnij otwory adapterów mostka agarowego białymi zatyczkami dokręcanymi palcami. Podłącz złącze z płaskim dnem do zespołu chipa MOE za pomocą adapterów wlotowych i wylotowych medium. Następnie podłącz adapter stożkowy Luer do zaworów trójdrogowych. Dodaj 2 mililitry 0,01% roztworu PLL za pomocą 3-mililitrowej strzykawki, która łączy się z trójdrogowym kranem wlotu medium i podłącz pustą 3-mililitrową strzykawkę do trójdrożnego kranu wylotu pożywki.

Napełnij obszary hodowli komórkowej roztworem PLL i powoli pompuj roztwór powlekający tam iz powrotem. Zamknij dwa trójdrogowe zawory odcinające, aby uszczelnić roztwór wewnątrz regionów hodowli. Inkubuj chip MOE w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez noc w inkubatorze wypełnionym 5% atmosferą dwutlenku węgla. Otwórz dwa trójdrogowe zawory odcinające i wypłucz pęcherzyki w kanałach, ręcznie pompując roztwór powlekający tam iz powrotem w kanale za pomocą dwóch strzykawek.

Pobrać 3 mililitry kompletnej pożywki do 3-mililitrowej strzykawki, która łączy się z trójdrożnym kurkiem wlotu pożywki i dodać go, aby zastąpić roztwór powlekający w obszarach hodowli komórkowych. Zamień białą wtyczkę dokręcaną palcami na adapter Luer i wstrzyknij 3% gorącej agarozy, aby napełnić adapter. Podłączyć strzykawkę Luer-lock do adaptera Luer i wstrzyknąć 3% gorącej agarozy przez czarną gumową zatyczkę, aby napełnić strzykawkę Luer-lock. Odczekaj 10 do 20 minut, aż agaroza ostygnie i stężeje.

Zainstaluj układ MOE z nasionami ogniw na przezroczystej grzałce ITO, która jest przymocowana do programowalnego stopnia z napędem XYZ utrzymywanego w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Wlej mNPC, ręcznie pompując do chipa MOE przez wylot medium. Następnie inkubuj zasiew komórkowy chip MOE na grzałce ITO przez 4 godziny.

Użyj przewodów elektrycznych, aby podłączyć multiplekser EF do układu MOE za pomocą elektrod na chipie. Podłącz multiplekser EF i generator funkcyjny do wzmacniacza, aby wyprowadzać impulsy prądu stałego o fali prostokątnej.

10:47

Szybkie wykrywanie fenotypów neurorozwojowych w ludzkich neuronalnych komórkach prekursorowych (NPC)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:46

Podział neuronów pochodzących z ludzkich komórek macierzystych na wstępnie zmontowane plastikowe chipy mikroprzepływowe

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:36

Analiza przesiewowa, różnicowanie i dojrzewanie płodowych i dorosłych komórek macierzystych pochodzących z płodowych i dorosłych komórek macierzystych układu nerwowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:15

Sterowana polem elektrycznym ukierunkowana migracja neuronalnych komórek progenitorowych w środowiskach 2D i 3D

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

01:56

Różnicowanie ludzkich embrionalnych komórek macierzystych w progenitory nerwowe

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:15

Różnicowanie nerwowych komórek progenitorowych w neurony

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:22

Różnicowanie indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych w neuronalne komórki progenitorowe

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:06

Bezpośrednia indukcja ludzkich nerwowych komórek macierzystych z krwiotwórczych komórek progenitorowych krwi obwodowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:49

Rusztowanie przewodzące prąd elektryczny do modulacji i dostarczania komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:13

Generowanie indukowanych nerwowych komórek macierzystych z obwodowych komórek jednojądrzastych i różnicowanie w kierunku prekursorów neuronów dopaminergicznych do badań transplantacyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026