$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weźmy transdukowane przez człowieka indukowane pluripotencjalne komórki macierzyste lub hiPSC, z nadekspresją neurogeniny-2, napędzane przez system indukowany antybiotykiem doksycykliną.
Przenieś je do obszarów elektrod aktywnych pokrytych białkiem adhezyjnym w studzienkach wielodołkowej matrycy mikroelektrod.
Pozwól hiPSC przyczepić się do powlekanych obszarów elektrod aktywnych.
Dodaj pożywkę uzupełnioną doksycykliną, która indukuje nadekspresję neurogeniny-2, specyficznego dla neuronów czynnika transkrypcyjnego.
Neurogenina-2 uruchamia szlaki molekularne i prowadzi do różnicowania hiPSC w neuronalne komórki prekursorowe, podczas gdy składniki mediów wspomagają przeżycie komórek.
Wprowadź astrocyty do studzienek układu mikroelektrod, gdzie przylegają do obszaru aktywnego elektrody.
Zastąp pożywkę pożywką neurobazalną zawierającą neurogenne czynniki wzrostu, doksycyklinę i inhibitor wzrostu komórek.
Inhibitor zapobiega proliferacji astrocytów i eliminuje niezróżnicowane hiPSC.
Z biegiem czasu utrzymująca się ekspresja neurogeniny-2 i czynniki wzrostu napędzają różnicowanie neuronalnych komórek prekursorowych w neurony.
Ponadto zastąp pożywkę pożywką neuropodstawną zawierającą surowicę dla przeżycia astrocytów.
Astrocyty wydzielają czynniki wzrostu sprzyjające dojrzewaniu neuronów i tworzeniu synaps, tworząc sieć neuronalną.
W przypadku sześciodołkowych MEA rozcieńczyć komórki, aby uzyskać zawiesinę komórek 7,5 x 105 komórek na mililitr. Odessać rozcieńczoną lamininę z sześciodołkowych MEA. W przypadku sześciodołkowych MEA należy płytkować ogniwa, dodając 100 mikrolitrów zawiesiny ogniw do obszaru aktywnej elektrody w każdym dołku.
Następnie umieść sześciodołkowe MEA w nawilżonym inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza. Po dwóch godzinach ostrożnie dodaj 500 mikrolitrów przygotowanej pożywki E8 do każdej studzienki z sześciodołkowych MEA. Następnie umieść sześć dołków MEA na noc w nawilżonym inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Trzeciego dnia podgrzej 0,05% trypsyny-EDTA do temperatury pokojowej. Ciepły DPBS w DMEM/F-12 z 1% penicyliną-streptomycyną do 37 stopni Celsjusza. Następnie odessać zużytą pożywkę z hodowli astrocytów szczura. Umyj kulturę, dodając 5 mililitrów DPBS i delikatnie ją roztrząśnij.
Następnie odessaj DPBS i dodaj 5 mililitrów 0,05% trypsyny-EDTA. Delikatnie potrząśnij trypsyną-EDTA. Następnie inkubuj komórki w nawilżonym inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 5 do 10 minut. Następnie sprawdź pod mikroskopem, czy komórki są odłączone.
Odłączyć ostatnie komórki, uderzając kilka razy w kolbę. Następnie dodać 5 mililitrów DMEM/F-12 do kolby. Delikatnie rozetrzeć komórki wewnątrz kolby za pomocą 10-mililitrowej pipety. Następnie zbierz zawiesinę komórek w 15-mililitrowej probówce. Obracaj probówkę 200 razy g przez osiem minut.
Następnie odessać supernatant i ponownie zawiesić komórki w 1 mililitrze DMEM/F-12. Określ liczbę komórek na mililitr za pomocą hemocytometru.
Następnie dodaj 7,5 x 104 astrocyty do każdej studzienki sześciodołkowych MEA i dodaj 2 x 104 astrocyty do każdej studzienki 24-dołkowej płytki. Inkubuj komórki przez noc w nawilżonym inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza.