JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 3:32 min • July 8th, 2025
Zacznij od cyklicznego monofosforanu adenozyny lub cAMP, cząsteczki sygnałowej, która reguluje różne funkcje komórkowe. Dodaj cAMP do kokultury neuronów i makrofagów.
Cząsteczki cAMP z pożywki i czynniki wzrostu z neuronów wyzwalają aktywację makrofagów.
Przenieść wkładkę z aktywowanymi makrofagami do innego dołka zawierającego pożywkę do hodowli makrofagów.
Tutaj makrofagi uwalniają cytokiny i chemokiny do pożywki, tworząc kondycjonowaną pożywkę lub CM.
Odwirować CM, aby osadzać składniki komórkowe.
Przenieś supernatant i przefiltruj, aby usunąć zanieczyszczenia komórkowe.
Dodaj pobrany CM do hodowli neuronalnej. Cytokiny i chemokiny w pobranym CM promują rozszerzenie neuronów.
Dodaj schłodzony paraformaldehyd, aby utrwalić komórki.
Dodaj bufor blokujący, aby uniknąć niespecyficznego wiązania przeciwciał. Przemyć, aby usunąć pozostały bufor.
Zastosuj przeciwciała pierwszorzędowe, które są skierowane przeciwko białkom cytoszkieletu neuronów. Umyć w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał.
Dodaj przeciwciała drugorzędowe sprzężone z czerwonym fluoroforem, które wiążą się z przeciwciałami pierwszorzędowymi. Umyć w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał.
Za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej wizualizuj neurony w kolorze czerwonym z rozszerzeniami.
Cztery godziny po wspólnej hodowli makrofagów neuronów dodaj 2 mikrolitry 100-mikromolowego roztworu db-cAMP do kokultur makrofagów neuronów. Po 24 godzinach napełnij pustą studzienkę 1 mililitrem pożywki do hodowli makrofagów na tej samej 6-dołkowej płytce.
Przenieś wkładkę do hodowli komórkowej w kokulturze makrofagów neuronów do pustej studzienki z pożywką do hodowli makrofagów. Po 72 godzinach odwirować pożywkę kondycjonowaną makrofagami o masie 239 g przez pięć minut w celu usunięcia składników komórkowych. Przepuść supernatant przez filtr 0,2 mikrometra, aby usunąć wszelkie pozostałe zanieczyszczenia komórkowe.
W tej procedurze należy wstępnie pokryć szkiełko 8-dołkowe poli-D-lizyną i lamininą. Następnie uzyskaj powiązane dorosłe neurony DRG w podłożu neuropodstawnym, uzupełnione witaminą B 27. Płytka 5 x 104 komórki na studzienkę na wstępnie powlekanym szkiełku z 8 dołkami.
Następnie umieść szkiełko komorowe w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza na dwie godziny, pozwalając komórkom przymocować się do dna. Następnie zastąp pożywkę hodowlaną rozmrożoną, kondycjonowaną pożywką, która jest wstępnie podgrzana do 37 stopni Celsjusza. 15 godzin po wstępnym posiewie usuń pożywkę i raz umyj komórki PBS.
Następnie dodaj 200 mikrolitrów lodowatego 4% roztworu paraformaldehydu do studzienek i inkubuj komórki z roztworem paraformaldehydu przez 20 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Następnie inkubuj utrwalone komórki z roztworem przeciwciała pierwotnego, rozcieńczonym 10% normalną surowicą kozią przez cztery godziny w temperaturze pokojowej lub przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Następnie wykonaj zdjęcia za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego, aby uwidocznić przerost neurytów.
Niniejsze badanie analizuje rolę cyklicznego adenozynomonofosforanu (cAMP) w aktywacji makrofagów oraz jego późniejszy wpływ na kultury neuronalne. Metodologia obejmuje kokulturę neuronów z makrofagami oraz analizę wpływu pożywki warunkującej na wzrost neurytów.
Metoda ta umożliwia mechanistyczną redukcję ryzyka w badaniu interakcji neuroimmunologicznych poprzez ilościowe określanie czynników rozpuszczalnych pochodzenia makrofagicznego, które stymulują wzrost neurytów, co wspiera walidację celów w modelach chorób neurodegeneracyjnych. Test ten zapewnia system istotny w kontekście chorobowym do oceny związków immunomodulujących o potencjale zwiększania naprawy neuronów, co dostarcza informacji pomocnych przy wczesnych decyzjach typu go/no-go w procesach odkrywania leków. Poprzez powiązanie aktywacji immunologicznej z funkcjonalnymi fenotypami neuronalnymi, metoda ta zwiększa pewność predykcyjną na etapach identyfikacji wiodących związków.
Analiza ta wpisuje się w kontinuum procesów badawczych – od testowania hipotez dotyczących celu molekularnego, przez identyfikację związków wiodących, aż po przedkliniczną ocenę skuteczności – zapewniając funkcjonalny odczyt efektów immunomodulacyjnych w kontekście stanu zdrowia neuronów.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026