Śledzenie transportu aksonalnego organelli w neuronach ruchowych za pomocą urządzenia mikroprzepływowego

0 wyświetleń3:00 min • July 8th, 2025

Zacznij od komory mikroprzepływowej pokrytej polimerem z dołamkami proksymalnymi i dystalnymi połączonymi wieloma mikrorowkami.

W studzience proksymalnej umieść embrionalne tkanki rdzenia kręgowego myszy bogate w rozwijające się neurony ruchowe.

Uzupełnij to dobrze pożywką. Inkubuj, aby umożliwić wzrost neuronów i przyleganie do powierzchni pokrytej polimerem.

Później dodaj pożywkę bez czynnika wzrostu do studzienki proksymalnej

.

W studzienkach dystalnych dodaj większą objętość pożywki zawierającej czynniki wzrostu, aby uzyskać różnice w stężeniu i objętości.

Różnice te powodują, że aksony, dłuższe projekcje neuronalne, rosną w kierunku dystalnych studzienek przez mikrorowki.

Dodaj fluorescencyjny roztwór barwnika do obu studzienek.

Cząsteczki barwnika dostają się do neuronów i barwią mitochondria i kwaśne organelle na obu końcach.

W obrazowaniu konfokalnym na żywo fluorescencyjnie barwione organelle poruszają się w obu kierunkach między ciałami komórek nerwowych a aksonami, potwierdzając transport aksonalny w neuronach ruchowych.

Usunąć całe podłoże z proksymalnej komory MFC. Podnieś pojedynczy eksplant rdzenia kręgowego za pomocą pipety o łącznej objętości czterech mikrolitrów i wstrzyknij go jak najbliżej jaskini. Wyciągnij nadmiar płynu z dołu proksymalnego przez boczne wyloty. Powtórz poprzedni krok jeszcze dwa razy i upewnij się, że eksplantaty są osadzone w kanale proksymalnym. Powoli dodaj 150 mikrolitrów pożywki SCEX do studzienki proksymalnej.

Jednego dnia po posiewie wymień pożywkę SCEX w komorze proksymalnej i dodaj bogatą pożywkę SCEX do komory dystalnej, utrzymując gradient objętości co najmniej 15 mikrolitrów na studzienkę między studzienką dystalną i proksymalną. Po czterech do sześciu dniach aksony powinny przejść do dystalnego przedziału i być gotowe do obrazowania transportu aksonalnego.

Aby oznaczyć mitochondria i przedziały kwasowe, przygotuj świeżą pożywkę SCEX ze 100-nanomolowym Mitotracker deep red FM i 100-nanomolowym czerwonym LysoTracker i dodaj go do komór mikroprzepływowych. Inkubuj je przez 30 do 60 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza, a następnie umyj trzykrotnie ciepłym podłożem SCEX. Kontynuuj obrazowanie na żywo transportu aksonalnego, uzyskując 100-poklatkową serię zdjęć w odstępach 3-sekundowych, w sumie 5 minut na film.

10:53

Obrazowanie w czasie rzeczywistym transportu aksonalnego BDNF znakowanego kropkami kwantowymi w neuronach pierwotnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:24

Rozszerzenie zestawu narzędzi do obrazowania in vivo transportu aksonalnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:55

Selektywna depolaryzacja mitochondriów aksonalnych wspomagana mikrofluidyką

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:55

Ocena mobilności neuronalnych komórek macierzystych z wykorzystaniem mikroprzepływowego urządzenia opartego na żelu agarozy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:09

Charakterystyka składu silników molekularnych na ruchomym ładunku aksonalnym za pomocą analizy "mapowania ładunku"

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:32

Analiza transportu i morfologii mitochondriów w indukowanych przez człowieka pluripotencjalnych neuronach pochodzących z komórek macierzystych w dziedzicznej paraplegii spastycznej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:12

Transport aksonalny organelli w kulturach neuronów ruchowych z wykorzystaniem systemu komór mikroprzepływowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:52

Obrazowanie i analiza transportu neurofilamentów w wyciętym nerwie piszczelowym myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:47

Optymalizacja wizualizacji transportu aksonalnego ładunków endogennych za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej u żywych Caenorhabditis elegans

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:00

Chip mikroprzepływowy do budowy modeli uszkodzeń aksonalnych i umożliwiający analizę multiomiczną

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026