JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 3:00 min • July 8th, 2025
Zacznij od komory mikroprzepływowej pokrytej polimerem z dołamkami proksymalnymi i dystalnymi połączonymi wieloma mikrorowkami.
W studzience proksymalnej umieść embrionalne tkanki rdzenia kręgowego myszy bogate w rozwijające się neurony ruchowe.
Uzupełnij to dobrze pożywką. Inkubuj, aby umożliwić wzrost neuronów i przyleganie do powierzchni pokrytej polimerem.
Później dodaj pożywkę bez czynnika wzrostu do studzienki proksymalnej
.W studzienkach dystalnych dodaj większą objętość pożywki zawierającej czynniki wzrostu, aby uzyskać różnice w stężeniu i objętości.
Różnice te powodują, że aksony, dłuższe projekcje neuronalne, rosną w kierunku dystalnych studzienek przez mikrorowki.
Dodaj fluorescencyjny roztwór barwnika do obu studzienek.
Cząsteczki barwnika dostają się do neuronów i barwią mitochondria i kwaśne organelle na obu końcach.
W obrazowaniu konfokalnym na żywo fluorescencyjnie barwione organelle poruszają się w obu kierunkach między ciałami komórek nerwowych a aksonami, potwierdzając transport aksonalny w neuronach ruchowych.
Usunąć całe podłoże z proksymalnej komory MFC. Podnieś pojedynczy eksplant rdzenia kręgowego za pomocą pipety o łącznej objętości czterech mikrolitrów i wstrzyknij go jak najbliżej jaskini. Wyciągnij nadmiar płynu z dołu proksymalnego przez boczne wyloty. Powtórz poprzedni krok jeszcze dwa razy i upewnij się, że eksplantaty są osadzone w kanale proksymalnym. Powoli dodaj 150 mikrolitrów pożywki SCEX do studzienki proksymalnej.
Jednego dnia po posiewie wymień pożywkę SCEX w komorze proksymalnej i dodaj bogatą pożywkę SCEX do komory dystalnej, utrzymując gradient objętości co najmniej 15 mikrolitrów na studzienkę między studzienką dystalną i proksymalną. Po czterech do sześciu dniach aksony powinny przejść do dystalnego przedziału i być gotowe do obrazowania transportu aksonalnego.
Aby oznaczyć mitochondria i przedziały kwasowe, przygotuj świeżą pożywkę SCEX ze 100-nanomolowym Mitotracker deep red FM i 100-nanomolowym czerwonym LysoTracker i dodaj go do komór mikroprzepływowych. Inkubuj je przez 30 do 60 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza, a następnie umyj trzykrotnie ciepłym podłożem SCEX. Kontynuuj obrazowanie na żywo transportu aksonalnego, uzyskując 100-poklatkową serię zdjęć w odstępach 3-sekundowych, w sumie 5 minut na film.
Niniejsza praca prezentuje podejście mikrofluidyczne do badania transportu aksonalnego w rozwijających się neuronach ruchowych pochodzących z tkanek embrionalnego rdzenia kręgowego myszy. Poprzez utworzenie gradientu stężeń czynników wzrostu, aksony są kierowane do odległych studni, co umożliwia obrazowanie ruchu organelli w czasie rzeczywistym.
Ilościowe śledzenie transportu organelli aksonalnych w neuronach ruchowych z wykorzystaniem urządzeń mikrofluidycznych umożliwia precyzyjne badanie mechanizmów transportu neuronalnego istotnych dla modeli chorób neurodegeneracyjnych. Podejście to zwiększa pewność predykcyjną we wczesnych etapach odkrywania leków, dostarczając powtarzalnych danych z żywych komórek na temat dynamiki subkomórkowej. Integracja takich systemów usprawnia podejmowanie decyzji dotyczących portfolio na etapie przechodzenia od walidacji celu do rozwoju modeli przedklinicznych.
Ta metoda obrazowania żywych komórek oparta na mikroprzepływach znajduje zastosowanie na styku wczesnego etapu odkryć, walidacji celu oraz badań przedklinicznych w ramach programów dotyczących chorób neurodegeneracyjnych.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026