Badanie regeneracji funkcjonalnych połączeń między wycinkami rdzenia kręgowego przy użyciu układu wieloelektrodowego

0 wyświetleń3:52 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Umieść matrycę wieloelektrodową (MEA) na szalce Petriego pod mikroskopem stereoskopowym. MEA składa się z elektrod ułożonych w siatkę z dwiema oddzielnymi strefami.

Dodaj kroplę osocza krwi do MEA. Umieść dwa wycinki rdzenia kręgowego uzyskane z zarodków szczurów, tak aby ich brzuszne strony były skierowane do siebie.

Wprowadzić roztwór trombiny, wymieszać go z osoczem i inkubować. Trombina powoduje koagulację osocza, tworząc biologiczne rusztowanie, które ułatwia przyleganie plastrów do MEA.

Dodaj pożywkę i inkubuj pod mieszaniem, sprzyjając tworzeniu połączeń komórkowych między plastrami i powodując ich fuzję.

Pod mikroskopem stereoskopowym wprowadź zmianę, przecinając połączenia tkankowe między plastrami. Dodaj pożywkę i inkubuj.

Podczas inkubacji neurony rosną w poprzek zmiany, aby połączyć plasterki.

Korzystając z komory rejestracyjnej, rejestruj aktywność elektryczną z obu wycinków rdzenia kręgowego, aby ocenić ich zregenerowane połączenia funkcjonalne.

Umieść szalkę Petriego z pokrytym układem mikroelektrod w środku, pod mikroskopem stereoskopowym. Ustaw ostrość matrycy i wyśrodkuj 6-mikrolitrową kroplę osocza kurzego na matrycy elektrod. Za pomocą małej szpatułki ostrożnie wsuń dwa odcinki rdzenia kręgowego tak, aby ich brzuszne strony były skierowane do siebie, do kropli osocza.

Następnie dodaj 8 mikrolitrów trombiny wokół kropli osocza kurczaka. Następnie za pomocą końcówki pipety ostrożnie wymieszaj i rozprowadź mieszaninę osocza kurczaka i trombiny. Tuż przed tym, jak mieszanina osocza i trombiny kurczaka stanie się zbyt żylasta i zacznie krzepnąć, odessaj nadmiar płynu. Następnie przykryj szalkę Petriego i umieść ją w wilgotnej komorze. Umieść komorę w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza na około godzinę.

Po inkubacji ostrożnie dodaj do próbki 10 mikrolitrów pożywki. Zakryj szalkę Petriego i umieść ją z powrotem w inkubatorze na dodatkowe 45 minut. Następnie umieść każdy z zestawów kultur wieloelektrodowych w rurze rolkowej i dodaj 3 mililitry pożywki. Zamknij szczelnie pokrywę i umieść rurkę rolki w bębnie rolkowym. Obróć bęben z prędkością 1 do 2 obr./min w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza.

Za pomocą sterylnych kleszczyków z gumową końcówką wyjmij zestawy hodowli wieloelektrodowych z rurki rolkowej i umieść je na szalce Petriego pod mikroskopem stereoskopowym. Ustaw ostrość tkanki i sprawdź, czy dwie plastry są połączone.

Następnie przytrzymaj zespół stabilnie i umieść ostrze skalpela w rowku układu wieloelektrodowego w pobliżu plasterków tkanki. Trzymaj skalpel raczej poziomo, a następnie podnieś uchwyt skalpela do góry, ale pozwól ostrzu skalpela pozostać w rowku matrycy w taki sposób, aby ostrze toczyło się od podstawy do czubka, przecinając tkankę pokrywającą rowek. W razie potrzeby odciąć wszelkie pozostałe połączenia tkankowe za pomocą końcówki igły o rozmiarze 25. Pracuj tylko w obszarze w rowku i nie dotykaj delikatnych krawędzi.

Umieść zespoły kultur z matrycą wieloelektrodową z powrotem w rurze rolkowej i dodaj 3 mililitry świeżej pożywki do kultur. Następnie umieść rurkę rolkową z powrotem na bębnie rolkowym w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza.

Zamontuj zespół kultur z matrycą wieloelektrodową w komorze zapisu i nałóż około 500 mikrolitrów roztworu zewnątrzkomórkowego na matrycę. Następnie zamontuj zespół na mikroskopie. Odczekaj 10 minut, aż system się ustabilizuje, a następnie rejestruj podstawową spontaniczną aktywność z każdej z elektrod wykrywających aktywność przez 10 minut.

11:13

Analiza elektrofizjologiczna ludzkich kardiomiocytów pochodzących z pluripotencjalnych komórek macierzystych (hPSC-CM) przy użyciu macierzy wieloelektrodowych (MEA)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:28

Ocena wpływu związków zaburzających funkcjonowanie układu hormonalnego na rozwój funkcji sieci neuronalnej kręgowców z wykorzystaniem układów wieloelektrodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:47

Elektrofizjologia rdzenia kręgowego II: Wytwarzanie przyssawkowych elektrod zewnątrzkomórkowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:40

Analiza aktywności neuronalnej w pierwotnych mysich neuronach spiralnych przy użyciu układów wieloelektrodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:21

Zapisy elektrofizjologiczne do oceny regeneracji neuronów w współhodowanych wycinkach rdzenia kręgowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:46

Oparta na mikroelektrodach ocena sieci neuronalnych w wycinkach rdzenia kręgowego myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:14

Wieloelektrodowe zapisy pooperacyjnej tkanki korowej ludzkiego epilepsji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:25

Badanie regeneracji funkcjonalnej w organotypowych kokulturach rdzenia kręgowego hodowanych na matrycach wieloelektrodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:39

Stymulacja prądem stałym i wieloelektrodowa rejestracja aktywności podobnej do napadów w przygotowaniu do wycinka mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:51

Hodowla eksplantatów neuronów zwojów spiralnych i elektrofizjologia na układach wieloelektrodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026