JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 3:58 min • July 8th, 2025
Rozpocznij od przylegającej hodowli komórek zrębu szpiku kostnego.
Poddaj komórki niedotlenieniu, stanowi charakteryzującemu się obniżonym poziomem tlenu, przez wymagany czas.
Wyizolować komórki kondycjonowane hipoksją, a następnie odwirować i usunąć supernatant. Ponownie zawiesić komórki w neuronalnych pożywkach progenitorowych zawierających neuronalne czynniki wzrostu.
Przenieś komórki na płytkę hodowlaną o niskim przyczepieniu i inkubuj.
Kondycjonowanie hipoksji i czynniki wzrostu neuronów indukują różnicowanie komórek zrębu w komórki progenitorowe neuronów.
Powierzchnia płytki o niskim przyleganiu utrzymuje przodków w zawieszeniu, ułatwiając ich proliferację i agregację w trójwymiarowe neurosfery.
Zbierz neurosfery, odwiruj i usuń supernatant. Ponownie zawiesić komórki w pożywkach indukcyjnych glejowych zawierających specyficzne dla gleju czynniki wzrostu.
Przenieś neurosfery na płytkę hodowlaną pokrytą lamininą, składnikiem macierzy zewnątrzkomórkowej i poli-D-lizyną, dodatnio naładowanym polimerem syntetycznym.
Powlekana powierzchnia wspomaga adhezję komórek, ułatwiając przyczepianie się do neurosfery.
Specyficzne dla gleju czynniki wzrostu stymulują różnicowanie neuronalnych progenitorów w komórki podobne do komórek Schwanna, które wykazują charakterystyczną stożkową morfologię komórek Schwanna.
W celu wstępnego kondycjonowania hipoksyjnego najpierw zwolnij zacisk pierścieniowy i wyczyść odsłonięte części 70% etanolem. Następnie zdemontuj komorę hipoksji na elementy i umieść je w okapie z przepływem laminarnym w celu sterylizacji w świetle UV przez 15 minut.
Następnie przemyj 80% do 90% zlewających się kultur MSC 10 mililitrami PBS, jak właśnie pokazano, i potraktuj kultury świeżą pożywką wzrostową MSC uzupełnioną 25-milimolowym HEPES. Umieść potraktowaną kulturę w ponownie zmontowanej komorze hipoksji i dokręć zacisk pierścieniowy. Uszczelnij końce łączące komorę, aby upewnić się, że nie ma wycieku gazu i wypłucz mieszaninę gazów składającą się z 99% azotu i 1% tlenu do komory z natężeniem przepływu 10 litrów na minutę.
Po pięciu minutach umieść komorę w inkubatorze do hodowli komórkowych na 16 godzin. Następnego ranka odłącz komórki, jak właśnie pokazano, i zbierz je przez odwirowanie. Zawiesić osad w pożywce progenitorowej neuronalnej i wysiać 6 x 103 komórek na centymetr kwadratowy na sześciodołkowych płytkach o niskim przyczepie do ich hodowli w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% CO2 przez 12 dni.
Spore, nieprzylegające kulki komórek powinny być obserwowane od 6 do 7 dnia, przy czym więcej neurosfer jest widocznych w kulturach kondycjonowanych hipoksją niż w kulturach w normoksji w dniach od 10 do 12. W dniu 12 użyj 10-mililitrowej pipety, aby przenieść neurosfery do 15-mililitrowej stożkowej probówki i zebrać neurosfery przez odwirowanie.
Ponownie zawiesić kulki w DMEM / F12 i płytce od 5 do 10 neurosfer na centymetr kwadratowy na sześciodołkowych płytkach pokrytych poli-D-lizyną pokrytych lamininą w 1,5 mililitra pożywki do indukcji glejowej na studzienkę. Utrzymuj hodowlę komórek sferycznych przez co najmniej siedem dni, odświeżając pożywkę co trzy dni.
Niniejsze badanie analizuje różnicowanie komórek macierzystych szpiku kostnego w progenitorowe komórki neuronalne oraz komórki przypominające komórki Schwanna w warunkach hipoksji. Metodyka obejmuje wstępne przygotowanie w warunkach hipoksji, a następnie hodowlę w specjalistycznych pożywkach w celu stymulacji wzrostu i różnicowania komórek.
Metoda ta umożliwia generowanie komórek podobnych do komórek Schwanna z komórek macierzystych szpiku kostnego, zapewniając skalowalne źródło do modelowania chorób obwodowego układu nerwowego oraz zastosowań w medycynie regeneracyjnej. Prekondycjonowanie hipoksją zwiększa efektywność różnicowania, wspomagając walidację celów w modelach bólu neuropatycznego i uszkodzeń nerwów. Podejście to wspiera redukcję ryzyka mechanistycznego poprzez wytwarzanie istotnych dla przebiegu choroby komórek glejowych do badań przesiewowych przedklinicznych i odkrywania biomarkerów.
Metoda ta integruje się z wczesnymi etapami procesów odkrywczymi poprzez konwersję dostępnych mezenchymalnych komórek macierzystych w komórki linii glejowej, co umożliwia późniejszą analizę fenotypową oraz przesiewową w celu identyfikacji nowych celów terapeutycznych.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026