$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weźmy na przykład ciała embrionoidalne (EB) pochodzące z ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych. Te EB składają się z trzech listków zarodkowych.
Przenieść EBs do pokrytego matrycą naczynia hodowlanego zawierającego odpowiednią pożywkę i inkubować.
Matryca umożliwia EB przyczepienie się do naczynia hodowlanego.
Czynniki wzrostu i składniki odżywcze w pożywce ułatwiają komórkom ektodermalnym EB tworzenie agregatów neuroepitelialnych ułożonych w okrągły wzór zwany rozetą.
Odetnij fragmenty rozety i oderwij je od naczynia.
Zbierz fragmenty i zakręć je w dół.
Odrzucić supernatant i ponownie zawiesić fragmenty.
Za pomocą pipety przesuwaj fragmenty w górę i w dół, aby je rozdzielić.
Dodać żądaną liczbę komórek do pokrytej matrycą płytki studzienkowej zawierającej pożywkę różnicującą.
Składniki pożywki różnicującej ułatwiają komórkom neuronabłonkowym przekształcenie się w pełni funkcjonalne komórki neuronalne i glejowe, pierwotne komórki układu nerwowego.
Drugiego dnia odessać standardowy roztwór powlekający matrycę z wcześniej przygotowanego 60-mililitrowego naczynia i dodać do naczynia 5 mililitrów kompletnej pożywki do indukcji neuroepitelialnej lub NRI. Pracując pod mikroskopem stereoskopowym przy 4-krotnym powiększeniu i używając pipety o pojemności 200 mikrolitrów, zbierz około 50 pływających ciał embrionalnych i przenieś je do jednego powlekanego naczynia. Następnie inkubuj naczynie w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla.
Następnego dnia, trzeciego dnia procedury różnicowania, sprawdź szalkę pod mikroskopem przy 10-krotnym powiększeniu, aby upewnić się, że wszystkie ciała zarodków są połączone. Następnie delikatnie wykonać całkowitą wymianę pożywki z kompletnym podłożem NRI. Zmieniaj pożywkę NRI co drugi dzień aż do siódmego dnia, kiedy powinny być widoczne rozetowe agregaty neuronabłonkowe.
W siódmym dniu pokryj 96-dołkową płytkę, pipetując 100 mikrolitrów wzorcowej matrycy rozcieńczonej w pożywce hodowlanej do każdego dołka. Ósmego dnia pokrój agregaty przypominające rozetę na fragmenty pod mikroskopem stereoskopowym przy 10-krotnym powiększeniu w sterylnych warunkach.
Zwróć uwagę, że rozety mają tendencję do łatwego odklejania się od naczynia po dotknięciu igłą. W takim przypadku częściowo zdezagreguj oderwaną rozetę za pomocą końcówki igły. Jeśli rozety pozostaną częściowo przymocowane, użyj pipety o pojemności 200 mikrolitrów, aby zakończyć odłączanie fragmentów rozety.
Sadzonki rozetowe wymagają dobrych zdolności manualnych i precyzji, aby uniknąć wycinania pochodnych nieneuroektodermalnych.
Następnie zbierz fragmenty rozety i ich podłoże do 15-mililitrowej stożkowej probówki. Opłucz naczynie 2 mililitrami pożywki NRI, aby odzyskać wszystkie fragmenty. Następnie wiruj fragmenty rozety 112 razy g przez jedną lub dwie minuty.
Po zassaniu supernatantu delikatnie zawiesić osad w 1 mililitrze wstępnie podgrzanego 1x DPBS bez wapnia i magnezu. Delikatnie pipetuj fragmenty rozety w górę i w dół, aby częściowo je rozdzielić. Następnie dodaj 4 mililitry kompletnej pożywki NRI i policz komórki za pomocą błękitu trypanowego i automatycznego licznika komórek.
Następnie odessać wzorcowy roztwór do powlekania matrycy z płytki 96-dołkowej i umieścić komórki w studzienkach o gęstości około 15 000 komórek na centymetr kwadratowy w podłożu NRI. Inkubuj płytkę przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla. W dniu 10 wykonaj całkowitą zmianę pożywki przy użyciu kompletnego podłoża różnicowania neuronów.