JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 2:16 min • July 8th, 2025
Zacznij od płytki hodowlanej pokrytej syntetycznym polimerem i białkiem adhezyjnym.
Dodaj nerwowe komórki progenitorowe rdzenia kręgowego zawieszone w pożywce różnicującej neurony ruchowe, uzupełnione drobnocząsteczkowym inhibitorem.
Powlekana powierzchnia płytki ułatwia przyleganie komórek.
Małocząsteczkowy inhibitor blokuje specyficzne kinazy białkowe, zapobiegając apoptozie komórkowej.
Usuń zużytą pożywkę i dodaj świeżą pożywkę różnicującą.
Pożywka zawiera związek, który wspomaga różnicowanie progenitorów neuronów w progenitory neuronów ruchowych.
Dodatkowo pojawiają się przodkowie zaangażowani w glej.
Następnie zastąp pożywką różnicującą uzupełnioną inhibitorem syntezy DNA.
Inhibitory te selektywnie indukują uszkodzenie DNA i śmierć u progenitorów glejowych, podczas gdy progenitorzy neuronów ruchowych różnicują się w dojrzałe neurony.
Umyj komórki buforem i dodaj pożywkę różnicującą bez inhibitorów, aby utrzymać neurony.
Podczas hodowli regularnie wymieniaj podłoże, aby uzupełnić składniki odżywcze.
Dodatkowo zastąp pożywkę pożywką uzupełnioną białkiem adhezyjnym, aby wzmocnić przyczepienie neuronów, ustanawiając jednorodną kulturę neuronów ruchowych.
Jeśli hodowle neuronalnych komórek progenitorowych zostały zamrożone, rozmroź je. Po wymianie pożywki i przepłukaniu PBS zgodnie z opisem w manuskrypcie, zmień pożywkę na pożywkę do różnicowania neuronów ruchowych zawierającą 0,02 mikromolowego arabinozydu cytozyny.
Następnie inkubuj komórki przez 48 godzin w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla, gdy progenitorzy zaangażowani w glej wyłaniają się jako pojedyncze proliferujące płaskie komórki pod postmitotycznymi progenitorami neuronów ruchowych zagregowanymi w klastry komórek. Później wykonaj wymianę pożywki zgodnie ze wskazaniami w rękopisie.
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje protokół różnicowania komórek progenitorowych neuronów rdzenia kręgowego w neurony ruchowe z wykorzystaniem płytki hodowlanej powlekanej syntetycznym polimerem. Proces ten obejmuje zastosowanie specyficznych inhibitorów w celu ukierunkowania różnicowania oraz utrzymania żywotności komórek.
Niniejszy protokół umożliwia generowanie homogenicznych kultur neuronów ruchowych z komórek progenitorowych układu nerwowego rdzenia kręgowego, zapewniając skalowalny i powtarzalny system do modelowania chorób neurodegeneracyjnych, takich jak ALS. Poprzez selektywną eliminację progenitorów glejowych za pomocą ukierunkowanego leczenia inhibitorami, metoda ta zwiększa czystość i dojrzałość funkcjonalną populacji neuronów ruchowych, co wspiera ograniczanie ryzyka mechanistycznego w wczesnej fazie walidacji celów terapeutycznych. Podejście to zwiększa wiarygodność prognostyczną w kampaniach przesiewowych fenotypowych, dostarczając istotnej dla choroby platformy komórkowej o określonych właściwościach elektrofizjologicznych.
Metoda ta wpisuje się w proces odkrywania leków, od wczesnego testowania hipotez dotyczących punktów uchwytu po identyfikację wiodących związków, stanowiąc odnawialne źródło istotnych dla choroby neuronów ruchowych do iteracyjnych badań przesiewowych oraz analiz mechanizmu działania.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026