JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 2:57 min • July 8th, 2025
Weźmy urządzenie mikroprzepływowe pokryte syntetycznym polimerem i białkiem adhezyjnym.
Urządzenie składa się ze studzienek i połączonych ze sobą komór hodowlanych oddzielonych mikrorowkami.
W komorach znajdują się wybite otwory do umieszczania tkanek.
Uzyskaj zwoje nerwu trójdzielnego, zbiór ciał komórek neuronu trójdzielnego i zarodki zębów, struktury prenatalne, które rozwijają się w zęby dorosłe, z zarodka myszy.
Umieść tkanki w otworach i dodaj odpowiednią pożywkę hodowlaną.
Składniki odżywcze i witaminy zawarte w pożywce zarodkowej zęba ułatwiają przetrwanie zarazków zębów podczas hodowli.
Powlekana powierzchnia urządzenia i czynniki wzrostu w ośrodku zwojów nerwu trójdzielnego ułatwiają wzrost neurytów i aksonów.
Aksony docierają do komory zarodkowej zęba przez mikrorowki.
Sygnały pochodzące z zębów prowadzą do odpychania neuronów, umożliwiając aksonom otoczenie zarodka zęba bez jego unerwiania.
Umyj komory hodowlane buforem i utrwalij tkanki utrwalaczem.
Kokultura jest teraz gotowa do dalszej analizy.
Po rozwarstwieniu zwojów nerwu trójdzielnego i zarodków zębów usuń lamininę z urządzeń mikroprzepływowych i napełnij komory 200 mikrolitrami odpowiednich mediów. Za pomocą kleszczy delikatnie przenieś wypreparowane zwoje nerwu trójdzielnego i zarodki zębów do otworów utworzonych za pomocą stempla biopsyjnego. Upewnij się, że zarodki zębów nie unoszą się na wodzie i toną, dopóki nie zetkną się ze szkiełkami nakrywkowymi.
Hoduj próbki w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla. Zmieniaj pożywkę co 48 godzin przez 10 dni. Aby zmienić pożywkę, najpierw usuń pożywkę, kierując pipetę w stronę zewnętrznej strony studzienek. Następnie dodaj świeże, wstępnie podgrzane podłoże po stronie studzienek znajdujących się naprzeciwko komór.
W okresie hodowli należy w dowolnym momencie obrazować współkultury za pomocą mikroskopii świetlnej. Po okresie hodowli umyj komory, pipetując 150 mikrolitrów PBS do jednej studzienki na komorę i pozwalając PBS przepływać przez komory. Powtórz pranie w sumie trzy razy.
Po ostatnim płukaniu usunąć PBS i utrwalić próbki, pipetując 150 mikrolitrów 4% paraformaldehydu w PBS do jednej studzienki na komorę i pozwalając mu przepłynąć do drugiej komory. Inkubuj urządzenie w temperaturze pokojowej przez 15 minut. Następnie dwukrotnie umyj komory PBS i przystąp do dalszej analizy, takiej jak barwienie immunofluorescencyjne i obrazowanie wyrostka.
Niniejsze badanie prezentuje urządzenie mikrofluidyczne zaprojektowane do kokultury zwojów trójdzielnych i zarodków zęba. Urządzenie to ułatwia wypustkowanie neuronów i umożliwia analizę oddziaływań neuronalnych z sygnałami pochodzącymi z zęba.
Ten mikrofluidyczny system kokultury umożliwia mechanistyczną minimalizację ryzyka w badaniu interakcji tkanki nerwowej na wczesnym etapie odkrywania leków poprzez izolację zmiennych wpływających na wzrost i prowadzenie neurytów. Zapewnia on system istotny z punktu widzenia jednostki chorobowej do badania wzorców unerwienia sensorycznego, które są kluczowe dla postnatalnego rozwoju zęba oraz powiązanych neuropatologii. Platforma ta wspiera walidację celu poprzez ilościową ocenę wpływu czynników molekularnych pochodzących z zęba na zachowanie neuronów, co zwiększa pewność prognostyczną w identyfikacji wiodących cząsteczek dla terapii neuro-dentystycznych.
Metoda ta integruje się z kontinuum odkryć, od testowania hipotez we wczesnych etapach biologii po opracowywanie testów w celu identyfikacji związków wiodących, a uzyskane wyniki służą do walidacji przedklinicznej kandydatów w obszarze neuro-stomatologii.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026