JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 4:25 min • July 8th, 2025
Weźmy kolonie ludzkich embrionalnych komórek macierzystych (hESC) hodowanych na macierzy nośnej.
Odessać pożywkę i dodać enzymy, które rozkładają matrycę.
Umyj, aby usunąć enzymy. Następnie dodaj pożywkę i pipetę, aby usunąć poluzowane kolonie, rozbijając je na mniejsze grona.
Przenieś klastry do świeżej pożywki i inkubuj, pozwalając gronom uformować kuliste agregaty.
Pozwól kulkom osiąść i usuń wszelkie martwe komórki.
Inkubować z pożywką zawierającą podstawowy czynnik wzrostu fibroblastów lub bFGF w celu proliferacji komórek.
Uzupełnij pożywką zawierającą stopniowo zmniejszające się stężenia bFGF, aby ułatwić różnicowanie komórek.
Wprowadź pożywkę do indukcji neuronalnej, promując różnicowanie hESC w nerwowe komórki macierzyste lub NSC, przekształcając kulki w organoidy wykazujące strukturę przypominającą rozetę neuronalną.
Dodaj antybiotyki, aby zapobiec rozwojowi zanieczyszczających drobnoustrojów podczas długotrwałej hodowli.
NSC różnicują się w neurony i komórki glejowe, stopniowo rozwijając organoidy w złożoną strukturę przypominającą korę mózgową.
Rozcieńczyć roztwór podstawowy proteazy do stężenia roboczego, dodając 1 mililitr roztworu podstawowego do 5 mililitrów pożywki DMEM lub F12 na każdą 6-dołkową płytkę hESC. Odessać i usunąć pożywkę do hodowli komórkowych, a następnie przykryć hESC roztworem proteazy. Umieść płytki w inkubatorze na 10 do 15 minut lub do momentu, gdy krawędzie kolonii zaokrąglą się i zaczną oddzielać się od matrycy, ale zanim całkowicie się zaokrąglą.
Przechyl płytkę, odessaj roztwór proteazy i delikatnie umyj komórki 2 mililitrami DMEM lub F12 na każdą studzienkę trzy razy. Upewnij się, że kolonie pozostają przyczepione do matrycy.
Dlatego tak ważne jest, aby kawałki SL miały odpowiedni rozmiar. Upewnij się więc, że są w stanie dispase przez odpowiedni czas. Jeśli są tam zbyt krótko, może być bardzo trudno je spłukać i rozdzielić. A jeśli pozostaną tam zbyt długo, mogą po prostu odpaść podczas etapów prania.
Dodaj z powrotem około 1 do 1,5 mililitra świeżej pożywki mTESR do każdej studzienki i przepłucz komórki płytki do 50-mililitrowej stożkowej probówki za pomocą delikatnego pipetowania, odessaj i dozuj hESC w płytce, aż osiągną około 1/30 swojego pierwotnego rozmiaru. Teraz skupiska kolonii przypominają kawałki o rozmiarach od 250 do 350 mikrometrów.
Przenieś komórki do pojedynczej kolby T75 o bardzo niskim przyłączu, zawierającej mililitry pożywki mTESR bez bFGF. Następnego dnia przechyl kolbę tak, aby żywe komórki zebrały się w rogu. Jeśli istnieje duża liczba komórek, które przylgnęły do dna kolby, użyj 10-mililitrowej pipety, aby przenieść komórki do nowej kolby.
Spodziewaj się, że przez pierwsze kilka dni będziesz mieć dużą populację martwych komórek. Gdy komórki osiądą, odessaj pożywkę i martwe komórki, pozostawiając około 10 mililitrów pożywki zawierającej żywe komórki, i dodaj 20 mililitrów pożywki o niskiej zawartości bFGF, uzupełnionej 30 nanogramami na mililitr bFGF. Po dwóch dniach sprawdź komórki. Większość komórek powinna wyglądać zdrowo i jasno.
Jeśli jednak więcej niż jedna trzecia komórek wydaje się ciemna, przechyl kolbę i zastąp 20 mililitrów pożywki 20 mililitrami pożywki o niskiej zawartości bFGF uzupełnionej 20 nanogramami na mililitr bFGF. W dniu 3 usuń połowę pożywki i zastąp ją 15 mililitrami pożywki HSC, uzupełnionej 10 nanogramami na mililitr bFGF.
W 5 dniu zastąp połowę pożywki 50 mililitrami pożywki do indukcji neuronalnej. Następnie co drugi dzień zastępuj połowę pożywki pożywką do indukcji neuronów. Po trzech tygodniach w hodowli dodaj 100x penicyliny-streptomycyny do pożywki w końcowym stężeniu 1x, jeśli jest to pożądane. Odświeżaj połowę nośnika co drugi dzień.
Niniejszy artykuł opisuje metodę różnicowania ludzkich embrionalnych komórek macierzystych (hESCs) w neuralne komórki macierzyste (NSCs), a następnie w organoidy przypominające struktury kory mózgowej. Proces ten obejmuje enzymatyczną degradację macierzy wspierającej, agregację komórek oraz zastosowanie specyficznych pożywek w celu promowania proliferacji i różnicowania komórek.
Niniejsza metoda umożliwia skalowalną generację ludzkich organoidów mózgu z hESC, zapewniając fizjologicznie istotny model do wczesnej walidacji celów terapeutycznych w neurofarmakologii. Dzięki wytwarzaniu struktur przypominających korę z warstwami neuronów i gleju, metoda ta wspiera mechanistyczną redukcję ryzyka w przypadku kandydatów na leki działające w OUN poprzez fenotypowy screening na modelach ludzkich. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną w podejmowaniu decyzji przedklinicznych poprzez modelowanie wczesnych procesów neurorozwojowych w powtarzalnym systemie bezsurowiczym.
Technika ta wpisuje się w kontinuum od odkrycia do badań przedklinicznych, umożliwiając walidację celu w ludzkich układach neuronalnych przed optymalizacją wiodącego związku oraz wspierając produkcję organoidów gotowych do analiz w ramach późniejszych kampanii przesiewowych.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026