Izolacja i hodowla neuronów ruchowych okoruchowych, bloczkowych i rdzeniowych z zarodka myszy

0 wyświetleń • 7:57 min. • July 8th, 2025

Weźmy transgeniczną ciężarną mysz i chirurgicznie usuńmy macicę z zarodkami zawierającymi fluorescencyjnie znakowane neurony ruchowe.

Przenieś macicę do naczynia z lodowatym buforem pod mikroskopem fluorescencyjnym.

Użyj światła widzialnego, aby wyizolować zarodki.

Usuń pysk i ogon zarodków i ustaw je w pozycji leżącej.

Korzystając z sygnału fluorescencyjnego, wykonaj nacięcie w śródmózgowiu, aby odsłonić jądra okoruchowe i bloczkowe, które zawierają neurony ruchowe.

Wyizoluj śródmózgowie zawierające jądra.

Otwórz grzbietową stronę tyłomózgowia i rdzeń kręgowy. Odizoluj rdzeń kręgowy, wytnij oba końce i zbierz kolumny zawierające rdzeniowe neurony ruchowe.

Potraktuj pobrane tkanki enzymami, aby zdysocjować macierz tkankową. Zbierz pojedyncze komórki i wyizoluj fluorescencyjnie znakowane neurony za pomocą FACS.

Dodaj pożywkę hodowlaną do izolowanych neuronów, przenieś komórki na mikropłytkę pokrytą substratem hodowlanym i inkubuj, pozwalając komórkom przylegać i rosnąć.

Utrzymuj neurony ruchowe w kulturze.

Zacznij od pobrania zarodków Islet-1 EGF-dodatnich od ciężarnej myszy około 11,5 dnia po zapłodnieniu. Dokładnie spryskaj brzuch etanolem i usuń macicę sterylnymi nożyczkami do mi

Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych

Zaloguj się

Przeglądaj więcej filmów

Izolacja neuronów ruchowych