$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weź przylegającą hodowlę śródbłonkowych komórek progenitorowych lub EPC, prekursorów komórek śródbłonka mikronaczyniowego mózgu.
Hodowla, uzyskana przez różnicowanie pluripotencjalnych komórek macierzystych, składa się z dodatnich EPC dla markera powierzchniowego CD31 i zanieczyszczających komórek CD31-ujemnych.
Inkubować z odczynnikiem dysocjacyjnym w celu odłączenia komórek i przefiltrowania w celu uzyskania zawiesiny jednokomórkowej.
Dodaj pożywkę, aby zneutralizować enzymy, odwirować, aby odrzucić supernatant i ponownie zawiesić komórki w buforze.
Inkubować z odczynnikiem blokującym w celu zahamowania komórkowych receptorów Fc, zapobiegając niespecyficznemu znakowaniu.
Dodaj przeciwciało sprzężone z fluoroforem specyficzne dla CD31 i inkubuj w celu oznaczenia EPC.
Odwirować i wyrzucić niezwiązane przeciwciała. Inkubować z kompleksami przeciwciał zawierającymi jedno przeciwciało, które wiąże się z fluoroforami.
Wprowadzić nanocząstki magnetyczne pokryte polimerem i inkubować, umożliwiając nanocząstkom związanie się z drugim przeciwciałem kompleksów.
Za pomocą pola magnetycznego wyizoluj komórki związane z nanocząstkami.
Odrzucić zawiesinę z nieznakowanymi komórkami CD31-ujemnymi i ponownie zawiesić oczyszczone komórki w pożywce. CD31-dodatnie EPC są gotowe do dalszych testów.
W 5 dniu hodowli komórek progenitorowych śródbłonka odessać pożywkę z dołków i dodać 1 mililitr odczynnika dysocjacyjnego do każdej studzienki. Inkubować płytkę przez 6 do 8 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Za pomocą mikropipety zdysocjuj i pojedynczoj komórki, a następnie przepuść zawiesinę komórek przez 40-mikrometrowe sitko do komórek, aby przefiltrować do 50-mililitrowej probówki zawierającej 10 mililitrów pożywki DMEM/F-12.
Aby zatrzymać reakcję trawienia, dodaj pożywkę DMEM/F-12/10 10 do oznaczenia 50 mililitrów. Dokładnie odpipetować i zarezerwować 10 mikrolitrów do policzenia komórek. Odwiruj 50-mililitrową probówkę o masie 200 g przez 5 minut w temperaturze od 20 do 25 stopni Celsjusza, aby osadzać komórki. Po odwirowaniu usunąć supernatant i ponownie zawiesić osad komórkowy z 10 mililitrami pożywki DMEM/F-12/10.
Przenieś zawiesinę komórek do świeżej 15-mililitrowej probówki. Wirować przy 200 g przez pięć minut w temperaturze od 20 do 25 stopni Celsjusza, aby ponownie otulić komórki. Następnie ponownie zawieś osad komórek w buforze przepływowym 1. Następnie dodać odczynnik blokujący FcR w stosunku 1 do 100 i inkubować przez 5 minut. Następnie dodaj rozcieńczony izotiocyjanian fluoresceiny w stosunku 1 do 200 lub przeciwciało CD31 znakowane FITC.
Inkubować zawiesinę przez 30 minut w ciemności w temperaturze od 20 do 25 stopni Celsjusza. Pod koniec inkubacji dodać 10 mililitrów buforu przepływu 1 do próbki i zarezerwować 10 mikrolitrów zawiesiny do analizy cytometrii przepływowej w celu określenia frakcji komórek CD31-dodatnich. Odwirować komórki w temperaturze 200 g przez 5 minut w temperaturze od 20 do 25 stopni Celsjusza. Po odwirowaniu ponownie zawiesić komórki roztworem buforu przepływowego 1.
Następnie dodaj 5 mikrolitrów koktajlu selekcyjnego FITC na 100 mikrolitrów zawiesiny komórkowej. Dokładnie wymieszać roztwór, pipetując i inkubować w ciemności przez 15 minut w temperaturze od 20 do 25 stopni Celsjusza. Następnie dodaj 5 mikrolitrów nanocząstek magnetycznych na 100 mikrolitrów zawiesiny komórek. Dobrze odpipetować mieszaninę i inkubować w ciemności przez 10 minut w temperaturze od 20 do 25 stopni Celsjusza.
Przenieś zawiesinę komórek do 5-mililitrowej probówki do cytometrii przepływowej i dodaj bufor przepływu 1, aby uzyskać całkowitą objętość 2,5 mililitra. Następnie umieść rurkę cytometrii przepływowej w magnesie na pięć minut. W ruchu ciągłym odwróć magnes i zdekantuj zawiesinę komórek zawierającą komórki nieznakowane przeciwciałem FITC-CD31. Utrzymuj magnes i rurkę w pozycji odwróconej przez 2 do 3 sekund, a następnie usuń pozostały płyn.
Zassać wszelkie kropelki na krawędzi rurki przed przywróceniem rurki do pozycji pionowej. Wyjmij rurkę cytometrii przepływowej z magnesu i dodaj 2,5 mililitra buforu przepływu 1, aby umyć pozostałe komórki CD31-dodatnie. Delikatnie odpipetuj komórki w górę i w dół, dwa lub trzy razy, aby je ponownie zawiesić. Następnie umieść rurkę przepływową w magnesie na pięć minut.
Powtórz mycie co najmniej cztery razy, aby usunąć nieoznakowane komórki FITC-CD31 z probówki. Wyjmij rurkę przepływową z magnesu i ponownie zawieś oczyszczone ogniwa CD31-dodatnie z żądaną ilością odpowiedniego medium. Zarezerwować dwie 1-mikrolitrowe podwielokrotności zawiesiny, jedną do zliczania komórek, a drugą do przeprowadzenia analizy cytometrii przepływowej w celu oceny czystości komórek CD31-dodatnich w próbkach do sortowania komórek aktywowanych po polu magnetycznym.