$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weź płytkę krzemową z mikrowzorami o pożądanej geometrii, aby wyhodować komórki w określonym kształcie.
Wlej na niego mieszaninę polimerów i pozwól mu zastygnąć.
Wytnij kwadratowy stempel polimeru.
Pokryj wzorzystą powierzchnię stempla warstwą białka, która ułatwia przyczepianie komórek.
Za pomocą strumienia powietrza usuń niezwiązane białka.
Weź szkiełko nakrywkowe pokryte polimerem.
Umieść na nim wzorzystą stronę stempla.
Naciśnij stempel, aby przenieść wzór. Usuń stempel.
Przenieś szkiełko nakrywkowe do studzienki zawierającej środek powierzchniowo czynny w celu pokrycia gołych powierzchni. Zwiększa to hydrofobowość powierzchni, zapobiegając niepożądanej adhezji komórek.
Usunąć środek powierzchniowo czynny i przemyć buforem fosforanowym.
Dodaj komórki Schwanna i pozwól im przyczepić się do mikrowzoru.
Umyj buforem, aby usunąć nieprzyłączone komórki.
Dodaj pożywkę hodowlaną i inkubuj.
Gdy komórki rosną wzdłuż powierzchni, przyjmują kształt mikrowzoru, umożliwiając badanie fenotypu komórek Schwanna.
Aby przygotować podłoże z mikrowzorem, umieść wzorzystą płytkę krzemową w okrągłej szalce Petriego o średnicy 150 milimetrów i wysokości 15 milimetrów i wlej odgazowany PDMS na płytkę. Zestal PDMS w piekarniku w temperaturze 60 stopni Celsjusza przez noc. Pozwól PDMS ostygnąć do temperatury pokojowej, a następnie użyj skalpela chirurgicznego, aby wyciąć stemple o wymiarach 30 na 30 milimetrów kwadratów zawierających prawidłowe wzory, uważając, aby nie uszkodzić wafla silikonowego. Wysterylizuj stemple PDMS i przestrajalne szkiełka nakrywkowe, zanurzając je w 70% etanolu na 30 minut.
Aby potwierdzić skuteczność mikrowzoru, należy osuszyć powierzchnię stempli PDMS za pomocą przefiltrowanego strumienia powietrza i odpipetować 50 mikrogramów na mililitr roztworu BSA, aby pokryć całą wzorzystą stronę stempla. Inkubować stempele z roztworem BSA przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej, aby umożliwić adsorpcję białek, a następnie wysuszyć stempelki na powietrzu, aby usunąć roztwór BSA. Użyj przefiltrowanego strumienia powietrza, aby wysuszyć powierzchnię przestrajalnych szkiełek nakrywkowych.
Doprowadź wzorzystą stronę stempla do konforemnego kontaktu z przestrajalnym szkiełkiem nakrywkowym, aby umożliwić absorpcję BSA na powierzchni szkiełka nakrywkowego, a następnie delikatnie dociśnij stempel do szkiełka nakrywkowego przez 5 minut. Zbadaj mikrowzór za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego z filtrem FITC. Aby wydrukować obszary adhezyjne komórek, a nie wzory fluorescencyjne, zastąp białko BSA lamininą.
Usuń stempele z szkiełek nakrywkowych i przenieś je na wysterylizowaną płytkę 6-dołkową. Dodaj 2 mililitry 0,2% roztworu Pluronic F127 do każdej studzienki, aby pokryć powierzchnię szkiełka nakrywkowego i inkubować płytkę przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Zassać roztwór F127 i przemyć szkiełka nakrywkowe 5 razy PBS, raz pożywką do hodowli komórkowych, a następnie zasiać komórki Schwanna o gęstości wysiewu 1000 komórek na centymetr kwadratowy. 45 minut po wysiewie komórek usuń pożywkę do hodowli komórkowych i dwukrotnie umyj szkiełka nakrywkowe PBS, aby zapobiec przyleganiu wielu komórek do tego samego wzoru. Utrzymuj komórki w pożądanym środowisku hodowli komórkowej przez 48 godzin przed oznaczaniem ilościowym.