Różnicowanie komórek progenitorowych oty w komórki nabłonka czuciowego, a następnie barwienie immunologiczne

0 wyświetleń3:55 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hodowla unieśmiertelniła multipotencjalne komórki progenitorowe (iMOP) w pożywce.

Czynniki wzrostu zawarte w pożywkach ułatwiają proliferację iMOP i tworzenie kolonii, tworząc otosfery.

Zbierz otosfery i pozwól im osiąść grawitacyjnie.

Usuń pożywkę i dodaj pożywkę różnicującą pozbawioną czynników wzrostu. Ułóż otosfery na płytce.

Brak czynników wzrostu inicjuje różnicowanie iMOP w komórki nabłonka czuciowego.

Zbierz zróżnicowane otosfery i pozwól im się uspokoić.

Usuń pożywkę i dodaj utrwalacz, aby zachować morfologię komórkową.

Następnie dodaj detergent, aby przepuszczalnie błony komórkowe i jądrowe.

Dodaj bufor blokujący, aby zapobiec wiązaniu się przeciwciał nieswoistych.

Wprowadź przeciwciała pierwszorzędowe ukierunkowane na określony marker różnicowania.

Dodaj sprzężone z fluoroforem przeciwciała drugorzędowe skierowane przeciwko przeciwciałom pierwszorzędowym, znakowaną fluorescencyjnie falloidynę do barwienia aktyny i barwnik wiążący DNA do barwienia jąder.

Zamontuj otosfery.

Za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej zwizualizuj barwienie, aby potwierdzić różnicowanie iMOP.

Trzy dni po posiewie użyj sedymentacji grawitacyjnej, aby zebrać otosfery, jak pokazano wcześniej. Przystąp do aspiracji supernatantu i delikatnie zawieś komórki w 2 mililitrach pożywki do różnicowania nabłonka czuciowego. Następnie użyj 10-mililitrowej pipety o dużym otworze, aby przenieść otosfery do nowej 60-milimetrowej naczynia. Różnicuj otosfery przez 10 dni, dodając do kultury 2 mililitry świeżej pożywki różnicującej co drugi dzień.

Następnie ponownie zbierz otosfery poprzez grawitację, sedymentację i odessaj zużyte podłoże. Następnie utrwal otosfery w 4% paraformaldehydzie w 1X PBS przez 15 minut w temperaturze pokojowej. Następnie usuń roztwór formaldehydu i umyj komórki w 1X PBS zawierającym 0,1% Triton X-100. Kontynuuj blokowanie otosfer w 1X PBS, uzupełnionym 10% koziej surowicy i 0,1% Triton X-100.

Po upływie jednej godziny zastąpić bufor blokujący buforem zawierającym odpowiednie rozcieńczenie przeciwciała Cdkn1b lub Cdh1. Następnie inkubuj komórki w przeciwciałie pierwszorzędowym przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza, a następnego dnia kontynuuj barwienie immunologiczne przy użyciu fluorescencyjnie znakowanych przeciwciał drugorzędowych, falloidyny i Hoechsta, jak opisano w innym miejscu.

Aby przygotować się do obrazowania, należy umieścić podłoże montażowe na szkiełku podstawowym, a następnie wprowadzić barwione otosfery do podłoża. Następnie połóż szkiełko nakrywkowe na próbce. Po pozostawieniu podłoża montażowego do wyschnięcia przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza, umieść szkiełko na stoliku mikroskopu odwróconego wyposażonego w 16-bitową kamerę CCD. Korzystając z obiektywu powietrznego 20X 0,75, uzyskaj obrazy epifluorescencji, zbierając dane z kanałów niebieskiego, zielonego, czerwonego i podczerwieni.

09:02

Protokół różnicowania ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych w mieszane kultury neuronów i gleju do badań neurotoksyczności

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:48

Szybkie, ukierunkowane różnicowanie komórek nabłonka barwnikowego siatkówki z ludzkich embrionalnych lub indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:48

Indukcja różnicowania śródbłonka w komórkach progenitorowych serca w warunkach niskiej surowicy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:11

Różnicowanie embrionalnych komórek macierzystych w prekursory oligodendrocytów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:19

Izolowanie komórek macierzystych węchowych z nosa gryzoni lub ludzi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:14

Izolacja komórek wykazujących ekspresję LacZ z tkanek ucha wewnętrznego myszy z wykorzystaniem cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:26

System hodowli oligodendrocytów pochodnych z komórek progenitorowych ludzkiego płodu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:00

Różnicowanie ludzkich embrionalnych komórek macierzystych w oligodendrocyty

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:14

Różnicowanie unieśmiertelnionych multipotencjalnych progenitorów otycznych w neurony zwojowe spiralne i ocena różnicowania

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:03

Hodowla embrionalnych eksplantatów ślimakowych myszy i transfer genów za pomocą elektroporacji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026