Infekowanie pierwotnych neuronów śródmózgowia myszy zmodyfikowanymi wirusami związanymi z adenowirusami

0 wyświetleń5:06 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od hodowli embrionalnych komórek śródmózgowia myszy na szkiełku nakrywkowym.

Leczenie zmodyfikowanymi wirusami związanymi z adenowirusami kodującymi fluorescencyjny kompleks wskaźnikowy wapnia pod promotorem specyficznym dla neuronów.

Inkubuj w celu przyczepienia się wirusa i internalizacji.

Usuń pożywkę, aby wyeliminować niezwiązane wirusy, a następnie dodaj pożywkę hodowlaną i inkubuj.

Zinternalizowane wirusy uwalniają swój genom w jądrze, gdzie specyficzny dla neuronu promotor napędza produkcję kompleksów wskaźnikowych wapnia wyłącznie w neuronach pierwotnych.

Kompleksy te obejmują białko fluorescencyjne znakowane białkiem wiążącym wapń i peptyd M13.

Przenieś szkiełko nakrywkowe do naczynia z buforem rejestrującym bogatym w jony wapnia, a następnie umieść je w komorze rejestrującej w celu obrazowania konfokalnego na żywo.

Wprowadź bufor rejestrujący glutaminian, powodując wiązanie glutaminianu z kanałami jonowymi, co prowadzi do wnikania jonów wapnia.

Jony te wiążą się z kompleksem, powodując zmianę konformacyjną i emisję fluorescencji.

W obrazowaniu na żywo jasne neurony wskazują na infekcję wirusową.

Zacznij od przygotowania 1 mililitra pożywki DMEM bez surowicy z 1 mikrolitrem hSyn-GCaMP6f AAV na danie. Odessać pożywkę do hodowli komórkowych z każdej pożywki i zastąpić ją 1 mililitrem przygotowanego DMEM z hSyn-GCaMP6f. Umieść naczynia z powrotem w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza na godzinę.

Po inkubacji odessać pożywkę za pomocą AAV i zastąpić ją 3 mililitrami pożywki do hodowli komórkowych. Inkubuj naczynia w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez pięć do siedmiu dni, zmieniając podłoże co dwa do trzech dni przez cały okres infekcji wirusowej.

Przygotuj 1 litr bufora zapisowego HEPES, 200 mililitrów 20 mikromolowego buforu zapisującego glutaminianu i 200 mililitrów 10 mikromolowego bufora zapisowego NBQX, zgodnie ze wskazówkami rękopisu.

Napełnij sterylną 35-milimetrową szalkę Petriego 3 mililitrami bufora nagrywającego. Weź szalkę Petriego z zainfekowanymi kulturami z inkubatora. Następnie ostrożnie chwyć krawędź jednego szkiełka nakrywkowego kleszkami z cienką końcówką i przenieś go do naczynia z buforem nagrywającym.

Umieść pozostałe szkiełko nakrywkowe w pożywce z powrotem do inkubatora o temperaturze 37 stopni Celsjusza i przetransportuj szalkę z buforem rejestrującym do mikroskopu konfokalnego. Uruchom oprogramowanie do obrazowania. Podczas inicjalizacji uruchom pompę perystaltyczną i umieść linię w buforze nagrywającym. Następnie skalibruj przepływ do 2 mililitrów na minutę.

Przenieść zakażone szkiełko nakrywkowe z płytki Petriego do kąpieli rejestrującej za pomocą cienkich kleszczy. Korzystając z 10-krotnego zanurzenia w wodzie i światła jasnego pola, znajdź płaszczyznę ostrości i poszukaj obszaru o dużej gęstości ciał komórek neuronowych. Następnie przełącz się na obiektyw 40x i ponownie ustaw ostrość próbki.

Wybierz i zastosuj AlexaFluor 488 w oknie listy barwników. Aby zapobiec prześwietleniu i fotowybielaniu fluoroforów, zacznij od niskich ustawień HV i mocy lasera.

Dla kanału AlexaFluor 488 ustaw HV na 500, wzmocnienie na 1x, a przesunięcie na 0. Ustaw moc na 5% dla linii laserowej 488. Zwiększ rozmiar otworu do 300 mikrometrów i użyj opcji skanowania "focus x2", aby optymalnie dostosować sygnały emisyjne do poziomów nasycenia. Ustawienia można następnie dostosować, aby uzyskać optymalną widoczność każdego kanału.

Po zoptymalizowaniu ustawień mikroskopu przesuń stolik, aby zlokalizować obszar z wieloma komórkami wykazującymi spontaniczne zmiany fluorescencji GCaMP6f i skup się na żądanej płaszczyźnie obrazowania.

Użyj narzędzia "Przytnij prosto", aby przyciąć ramkę obrazowania do rozmiaru, który pozwala osiągnąć odstęp między klatkami wynoszący nieco poniżej jednej sekundy. Ustaw okno interwału na wartość 1,0, a okno num na 600.

Aby nagrać film z serii t, wybierz opcję "Czas". Następnie użyj opcji skanowania "XYt", aby rozpocząć obrazowanie. Obserwuj pasek postępu obrazowania i przesuń linię z bufora zapisu HEPES do bufora zapisu glutaminianu o proporcji 20 mikromoli w odpowiednim punkcie czasowym.

Po zakończeniu obrazowania wybierz przycisk "seria zakończona" i zapisz gotowy film z serii t. Kontynuuj perfuzję glutaminianu przez dodatkowe 5 minut, tak aby hodowane neurony były wystawione na działanie glutaminianu przez łącznie 10 minut. Powtórz ten proces dla każdego szkiełka nakrywkowego, które ma być zobrazowane.

09:57

Ustalenie infekcji wirusowej i analiza interakcji gospodarz-wirus u Drosophila melanogaster

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:06

Skuteczna metoda produkcji adenowirusa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:01

Ekspresja transgenów w natywnym nabłonku dróg moczowych pęcherza moczowego za pomocą transdukcji za pośrednictwem adenowirusa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:47

Wewnątrzczaszkowe wstrzykiwanie wektorów wirusowych opartych na wirusach adeno-zależnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:58

Stereotaktyczne wstrzykiwanie wektorów wirusowych do przeprogramowania komórek glejowych w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:33

Dokanałowe podawanie wirusów w modelu mysim w leczeniu chorób ośrodkowego układu nerwowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:39

Stereotaktyczne wstrzyknięcie wektora wirusowego w celu warunkowej manipulacji genami w rdzeniu kręgowym myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:15

Śródmózgowe wstrzyknięcie wirusa do mózgu nowonarodzonego myszy w celu trwałej i rozległej transdukcji neuronalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:11

Metody i wskazówki dotyczące dożylnego podawania szczurom wirusa związanego z adenowirusem oraz ocena transdukcji ośrodkowego układu nerwowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:17

Bezpośrednie wstrzyknięcie dooponowe rekombinowanych wirusów związanych z adenowirusami u dorosłych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026