$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weźmy na przykład ludzkie indukowane pluripotencjalne komórki macierzyste (iPSC) hodowane na płytce pokrytej macierzą zewnątrzkomórkową.
iPSC są genetycznie modyfikowane w celu ekspresji czynników transkrypcyjnych, które indukują różnicowanie neuronów ruchowych.
Usuń pożywkę i dodaj enzymy, aby oderwać kolonie.
Mechanicznie zdysocjuj komórki w zawiesinę jednokomórkową i zbierz je.
Odwirować i usunąć supernatant.
Ponownie zawiesić komórki w pożywce zawierającej inhibitor, który zapobiega apoptozie komórkowej.
Ułóż komórki na naczyniu pokrytym matrycą.
Dodać świeże pożywki różnicujące zawierające antybiotyk doksycyklinę i inhibitory małocząsteczkowe.
Doksycyklina indukuje ekspresję czynnika transkrypcyjnego, podczas gdy inhibitory blokują specyficzne szlaki sygnałowe, promując różnicowanie iPSC do komórek progenitorowych neuronów ruchowych.
Dodaj enzymy, aby odłączyć komórki.
Zbierz komórki i mechanicznie je rozdziel.
Odwirować i wyrzucić supernatant. Ponownie zawiesić komórki w pożywkach neuronalnych.
Umieść komórki na mikroszkiełkach pokrytych białkiem adhezyjnym, aby promować przyleganie komórek.
Czynniki wzrostu w pożywce indukują dojrzewanie progenitorów do neuronów ruchowych.
W celu różnicowania neuronów ruchowych należy zdysocjować stabilnie transfekowane kultury komórkowe za pomocą odczynnika dysocjacyjnego, jak wykazano, aby umożliwić zebranie komórek w 15-mililitrowej probówce zawierającej 5 objętości pożywki DMEM / F12. Po odwirowaniu ponownie zawieś komórki w ludzkiej pożywce iPSC uzupełnionej mikromolowym inhibitorem ROCK do liczenia.
Zasiaj komórki na szalkach pokrytych matrycą o gęstości 6,25 x 104 komórki na centymetr kwadratowy. Przez następne dwa dni należy zastąpić supernatanty świeżą pożywką różnicującą uzupełnioną doksycykliną.
W drugim dniu zmień pożywkę na pożywkę Neurobasal B27 uzupełnioną inhibitorem gamma-sekretazy, inhibitorem receptora czynnika wzrostu śródbłonka naczyniowego i doksycykliną. W piątym dniu rozdziel komórki, jak pokazano, i ponownie zawieś odłączone komórki w 4 mililitrach pożywki DMEM / F12 w celu zliczenia.
Pipetowanie jest ważne dla całkowitej dysocjacji komórek.
Zamrozić podwielokrotność komórek progenitorowych neuronu ruchowego w pożywce do zamrażania komórek zgodnie z instrukcjami producenta i zebrać resztę komórek przez odwirowanie. Zawiesić osad w pożywce neuronalnej uzupełnionej 10 mikromolowym inhibitorem ROCK.
Wysiewaj komórki na mikroszkiełkach pokrytych poliornityną, pokrytych lamininą, z polimerowymi szkiełkami nakrywkowymi o gęstości 1 x 105 komórek na centymetr kwadratowy. W szóstym dniu ostrożnie zastąp pożywkę świeżą pożywką neuronalną bez inhibitora do hodowli do czasu dalszej analizy bez odłączania komórek od powierzchni podpory.