Rejestrowanie zmian w aktywności nerkowego nerwu współczulnego w odpowiedzi na ciśnienie tętnicze u szczurów

0 wyświetleń5:15 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weź znieczulonego szczura w pozycji leżącej na plecach i wykonaj nacięcie w okolicy pachwinowej, aby odsłonić tętnicę udową.

Zamknij tętnicę, aby tymczasowo ograniczyć przepływ krwi. Utwórz otwór, włóż cewnik wykrywający ciśnienie, aby zmierzyć ciśnienie tętnicze krwi i zabezpiecz cewnik.

Ustaw szczura w pozycji leżącej w ramie stereotaktycznej i wykonaj boczne nacięcie poniżej żeber.

Za pomocą mikroskopu zidentyfikuj nerkowe nerwy współczulne lub RSN, które regulują przepływ krwi do nerek.

Podnieś nerw na elektrodę rejestrującą, dodaj olej, aby zapobiec odwodnieniu nerwów i rejestruj aktywność elektryczną.

Wstrzyknąć dożylnie lek, który powoduje zwężenie tętnic, co podnosi ogólnoustrojowe ciśnienie krwi.

Baroreceptory wykrywają podwyższone ciśnienie krwi i sygnalizują pniu mózgu, aby hamował nerwy współczulne, w tym RSN.

Usuń olej, nałóż żel, aby zabezpieczyć elektrodę w celu stabilnego zapisu i monitoruj aktywność RSN.

Przejściowe zahamowanie aktywności RSN zbiegające się ze wzrostem ciśnienia tętniczego potwierdza indukowane przez leki hamowanie RSN.

Przed kanegulacją tętniczą należy sprawdzić cewnik wykrywający ciśnienie w dużym powiększeniu, aby potwierdzić, że cewnik jest wolny od pęcherzyków i zanieczyszczeń oraz ma nienaruszoną menisk między płynem a składnikami wypełnionymi żelem. Przed każdą implantacją należy uzupełnić żel na dystalnej końcówce cewnika i za pomocą magnesu włączyć nadajnik. Umieść luźny półwęzeł od góry w proksymalnym szwie, aby na krótko zamknąć tętnicę udową, a trzymając wprowadzacz cewnika w ręce niedominującej, użyj kleszczy do kaniulacji naczyń, aby chwycić końcówkę kaniuli jednostki telemetrycznej, aby uniknąć wyparcia żelu z końcówki.

Użyj wygiętej końcówki igły o rozmiarze 22, aby przebić otwór w tętnicy i włóż kaniulę do tętnicy tak daleko, jak to możliwe. Następnie zabezpiecz cewnik ciśnieniowy za pomocą proksymalnych i dystalnych opasek szwowych i wsuń korpus implantu telemetrycznego do boku przylegającego do nacięcia. Delikatnie przesuń szczura do pozycji leżącej w stereotaktycznej ramie chirurgicznej z głową między nausznikami.

Aby wyizolować nerwy współczulne nerek, podłącz drutową elektrodę nerkowo-nerkową lub RSNA do 10-krotnego przedwzmacniacza we wzmacniaczu mikroelektrodowym i wykonaj nacięcie skalpela rozciągające się od 4 do 5 centymetrów poniżej żeber w kierunku ogonowym, nieco bocznie do kręgosłupa.

Tępo rozkrój, aby uwidocznić mięśnie przykręgosłupowe i wykonać bardzo powierzchowne nacięcie ostroogonowe o długości od 1 do 2 centymetrów, w którym tłuszcz styka się z mięśniem. Za pomocą aplikatorów z bawełnianą końcówką rozprowadź tłuszcz z dala od mięśnia, aby uwidocznić nerkę bez wchodzenia do przestrzeni otrzewnej, i użyj retraktorów, aby delikatnie oddzielić nerkę od mięśni przykręgosłupowych, aby uwidocznić tętnicę nerkową i aortę brzuszną, a także użyj dużego powiększenia, aby zidentyfikować nerwy nerkowe w kieszeni nacięcia.

Pęczki nerwowe są najłatwiej widoczne w kącie prostym utworzonym przez aortę i tętnicę nerkową, ściśle podążając za tętnicą nerkową od aorty do nerek. Następnie za pomocą pęsety do mikropreparowania delikatnie wypreparuj z otaczającej tkanki fragment pęczka nerwowego, który ma zostać umieszczony na elektrodzie rejestrującej. Zamocuj drucianą elektrodę RSNA w uchwycie i opuść elektrodę do poziomu segmentu nerwowego.

Użyj haczyka nerwowego, aby delikatnie podnieść segment nerwu nerkowego na elektrodę bez rozciągania nerwu i wypełnij nacięcie olejem mineralnym, aby utrzymać odsłonięty nerek współczulny w stanie nawodnienia. Przymocuj zacisk uziemiający do zwierzęcia, na drugim końcu do klatki Faradaya i użyj filtrowania górnoprzepustowego, aby skierować sygnał do amplifiery. Następnie dostosuj wzmocnienie do 10 kiloherców, w tym monitor audio, aby ocenić wzór pękania RSNA.

Aby ocenić jakość zapisu RSNA, przywołaj baroreflex za pomocą 100-mikrolitrowego bolusa dożylnego wstrzyknięcia 10 mikrogramów na mililitr fenylefryny w celu podniesienia ciśnienia krwi i zahamowania aktywności nerkowego nerwu współczulnego, dostosowując położenie elektrod w celu poprawy sygnału w razie potrzeby. Po uzyskaniu wyraźnego sygnału odessać olej mineralny i zabezpieczyć elektrodę na miejscu żelem krzemionkowym.

11:08

Nowatorskie podejście do jednoczesnego rejestrowania aktywności nerek współczulnych i ciśnienia krwi za pomocą wlewu dożylnego u przytomnych, nieskrępowanych myszy.

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:35

Jednoczesny zapis elektrokardiograficzny i inwazyjny pomiar ciśnienia krwi u szczurów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:03

Indukcja śmierci mózgu u myszy za pomocą monitorowania ciśnienia tętniczego krwi i wentylacji za pomocą tracheostomii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:51

Badania skurczu i rozkurczu tętnicy krezkowej z wykorzystaniem zautomatyzowanej miografii drucianej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:09

Współczulne unerwienie tętnic nerkowych w mysim modelu nadciśnienia indukowanego angiotensyną II

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:51

Opracowanie algorytmu do przeprowadzenia kompleksowego badania dysrefleksji autonomicznej u zwierząt z dużym uszkodzeniem rdzenia kręgowego przy użyciu urządzenia telemetrycznego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:30

Ilościowe określanie ostrych zmian w aktywności nerek współczulnych w odpowiedzi na manipulacje ośrodkowego układu nerwowego u znieczulonych szczurów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:21

Zmodyfikowany mysi model regulacji reniny w zwężeniu tętnicy nerkowej z jedną nerką i jednym klipsem

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:56

Implantacja połączonych telemetrycznych przetworników EKG i ciśnienia krwi w celu określenia spontanicznej wrażliwości barorefleksu u przytomnych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:09

Długoterminowy, ciągły pomiar przepływu krwi w nerkach u przytomnych szczurów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026