RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Umieść szalkę Petriego zawierającą wypreparowaną larwę Drosophila z odsłoniętymi mięśniami i gałęziami nerwowymi na stoliku mikroskopowym.
Włożyć elektrodę referencyjną do roztworu do kąpieli na szalce Petriego.
Napełnij elektrodę rejestrującą roztworem izotonicznym.
Za pomocą mikromanipulatora umieść tę elektrodę nad mięśniem brzucha unerwionym przez neurony ruchowe.
Umieść końcówkę elektrody na bulionie synaptycznym, strukturze na końcu aksonu zawierającej neuroprzekaźniki.
Stale rejestruj miniaturowe pobudzające prądy połączeniowe lub mEJC, które są reakcją na spontaniczne uwalnianie neuroprzekaźników.
Prawidłowy zakres amplitudy mEJC potwierdza prawidłowe ustawienie elektrody.
Następnie umieść elektrodę stymulacyjną w pobliżu aksonu, który unerwia docelowy mięsień.
Zastosuj podciśnienie, aby wciągnąć akson do wnętrza elektrody.
Stopniowo zwiększaj prąd stymulacji, aby indukować potencjał czynnościowy.
To powoduje, że akson uwalnia neuroprzekaźniki w połączeniu nerwowo-mięśniowym, które są rejestrowane jako prądy synaptyczne.
Umieść szalkę Petriego z preparatem na stoliku mikroskopowym. Włóż elektrodę odniesienia do kąpieli. Napełnij elektrodę rejestrującą roztworem HL3. Pod obiektywem 10x zanurz elektrodę w kąpieli i umieść ją na mięśniach 6 i 7 segmentów brzucha 2, 3 lub 4 za pomocą mikromanipulatora.
Następnie przełącz obiektyw na 60X i skup się na obszarze zainteresowania za pomocą optyki epi-florescencji lub DIC. Umieść końcówkę elektrody na szczycie synaptycznych butonów, a następnie bardzo delikatnie dociśnij elektrodę do mięśnia, ponieważ nadmierny nacisk może uszkodzić NMJ lub wywołać wzrost spontanicznej aktywności synaptycznej.
Następnie włącz wzmacniacz, płytę AD i komputer. Następnie wybierz tryb cęgów napięcia na wzmacniaczu. Uruchom oprogramowanie do akwizycji, wybierz tryb bez przerw i obserwuj wygląd mEJC na ekranie komputera. Upewnij się, że amplituda mEJC mieści się w zakresie od 0,2 do 0,7 nanoampera.
Za pomocą mikromanipulatora pod kontrolą wizualną umieść elektrodę stymulacyjnej w pobliżu aksonu unerwiającego segmenty brzucha od 2 do 4. Zastosować podciśnienie, pociągając za tłok strzykawki podłączonej do uchwytu elektrody, tak aby akson został wciągnięty do wnętrza elektrody.
Następnie włącz stymulator. Przekręć pokrętło na jednostce izolacyjnej, aby ustawić prąd zerowy, a następnie delikatnie go zwiększaj, aż pojawią się EJC lub do momentu osiągnięcia progu. Stymulację należy przeprowadzić w reżimie ponadprogowym, przy wzroście prądu stymulacji około dwukrotnie w porównaniu z progiem dla obserwacji EJC.
Related Videos
10:40
Related Videos
18.7K Views
10:36
Related Videos
15.6K Views
08:04
Related Videos
3.7K Views
06:42
Related Videos
35.9K Views
10:10
Related Videos
16.1K Views
05:46
Related Videos
21.6K Views
09:12
Related Videos
14.1K Views
15:19
Related Videos
16.2K Views
11:31
Related Videos
11.9K Views
12:53
Related Videos
15K Views