-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
Wszczepienie zespołu elektrod do mózgu myszy w celu zapisu elektrofizjologicznego
Wszczepienie zespołu elektrod do mózgu myszy w celu zapisu elektrofizjologicznego
Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Neuroscience
Implantation of an Electrode Assembly in a Mouse Brain for Electrophysiological Recording

Wszczepienie zespołu elektrod do mózgu myszy w celu zapisu elektrofizjologicznego

Protocol
1,424 Views
05:36 min
July 8, 2025
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Zamocuj znieczuloną mysz na stereotaktycznej ramce zawierającej poduszkę grzewczą, aby utrzymać temperaturę ciała.

Nałóż lubrykant, aby zapobiec wysuszeniu oczu i wstrzyknij podskórnie roztwór elektrolitu, aby utrzymać nawilżenie.

Usuń sierść ze skóry głowy, zdezynfekuj obszar i wstrzyknij podskórnie środek przeciwbólowy, aby zmniejszyć ból.

Wykonaj nacięcie, aby odsłonić czaszkę, a następnie wyczyść ją, aby uwidocznić anatomiczne punkty orientacyjne w celu identyfikacji obszarów mózgu.

Nałóż klej dentystyczny i utwardź go za pomocą lampy utwardzającej, aby wspomóc implantację elektrody.

Wywierć otwory nad hipokampem i móżdżkiem i zamontuj zespół elektrod za pomocą uchwytu na ramie stereotaktycznej.

Elektrody bipolarne rejestrują aktywność hipokampa, podczas gdy elektroda referencyjna uzyskuje podstawową aktywność z móżdżku.

Włóż elektrody, zabezpiecz zespół cementem dentystycznym i odłącz od uchwytu.

Ponownie podać roztwór elektrolitu i środek przeciwbólowy.

Poczekaj, aż mysz całkowicie się zregeneruje przed wykonaniem zapisu elektrofizjologicznego.

Przed przystąpieniem do operacji zapisz wagę 8-tygodniowych myszy VGAT-Cre. Następnie umieść zwierzę w komorze indukcyjnej w celu wywołania znieczulenia. Umieść znieczuloną mysz na poduszce grzewczej w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Jeśli używasz systemu temperatury sterowanego sprzężeniem zwrotnym, włóż sondę temperatury do odbytnicy zwierzęcia w celu monitorowania temperatury podczas operacji. Aby rozpocząć operację, przekieruj strumień znieczulenia wziewnego do stożka nosowego i zamontuj zwierzę w ramie stereotaktycznej, delikatnie umieszczając przednie górne zęby w siekaczu i przesuwając stożek na nos, a następnie umieść nauszniki w uszach i przymocuj do ramy stereotaktycznej.

Upewnij się, że głowa zwierzęcia jest wypoziomowana i wyśrodkowana i nie można jej przesunąć przy lekkim sondowaniu. Po zamontowaniu zwierzęcia wstrzyknij myszom 0,5 mililitra normozolu w celu nawodnienia i nałóż lubrykant do oczu, aby zapobiec wysuszeniu rogówki. Monitoruj głębokość znieczulenia, ściskając palec u nogi kończyny tylnej. Jeśli u zwierzęcia nie ma odruchu wycofania, przystąp do usuwania włosów na skórze głowy myszy wokół obszaru operacyjnego. Po zakończeniu trzykrotnie zdezynfekuj czysty obszar skóry naprzemiennym stosowaniem etanolu i jodu, kończąc jodem, a następnie wstrzyknij podskórnie 0,05 mililitra 0,25% bupiwakainy.

Wykonaj nacięcie na czaszce za pomocą skalpela, a następnie wytnij część skóry nożyczkami chirurgicznymi odsłaniającymi czaszkę. Odepchnij skórę na bok przed oczyszczeniem czaszki ze wszystkich tkanek leżących pod spodem za pomocą bawełnianego wacika. Oczyść czaszkę nadtlenkiem wodoru za pomocą sterylnych wacików bawełnianych i spraw, aby szwy czaszki, bregma i lambda były widoczne. Za pomocą wiertła zamontowanego stereotaktycznie przesuń końcówkę wiertła na bregma i zero współrzędnych x, y i z, a następnie podnieś i przesuń wiertło do lambda, aby określić jego współrzędne i określić, czy głowica jest wypoziomowana.

Po dokładnym wysuszeniu czaszki nałóż jedną kroplę samotrawiącego kleju dentystycznego za pomocą aplikatora. Odczekaj 60 sekund przed utwardzeniem kleju dentystycznego za pomocą dentystycznego światła UV przez 40 sekund. Błyszcząca powierzchnia wskazuje, że klej został skutecznie usieciowany z czaszką. Za pomocą wiertła o średnicy 0,031 cala ostrożnie wywierć dwa otwory obustronnie w czaszce z prędkością 5,000 obrotów na minutę lub obroty, unikając wiercenia w mózgu. Zastosuj kroplę soli fizjologicznej, aby ułatwić wiercenie otworów na żareny. W celu wszczepienia elektrod wgłębnych hipokampa należy wywiercić w odległości 3 milimetrów z tyłu i 3 milimetry z boku od bregmy.

Wywierć jeden otwór na elektrodę referencyjną nad móżdżkiem, za lambdą w odległości 6 milimetrów z tyłu i 0 milimetrów z boku od bregmy. Następnie zamontuj sześciopinowy cokół ze zmontowanymi elektrodami w uchwycie elektrody na ramie stereotaktycznej. Wyrównując elektrody nad odpowiednimi otworami zadziorów, powoli opuść i poruszaj zestawem słuchawkowym, aby zlokalizować dwie dwubiegunowe końcówki elektrod tuż nad lewym i prawym otworem zadziorów hipokampa, a jeśli to konieczne, wyreguluj elektrodę referencyjną tak, aby unosiła się nad otworem, nad móżdżkiem.

Gdy elektrody skrętne hipokampa znajdują się tuż nad otworami, wyzeruj oś z i powoli opuść elektrodę do minus trzech milimetrów do prawego i lewego hipokampa i wprowadź elektrodę odniesienia do otworu nad móżdżkiem. Przygotuj cement dentystyczny, mieszając proszek i płyn w misce do mieszania, a następnie przykryj powierzchnię czaszki, elektrody i przestrzeń między powierzchnią czaszki a dnem cokołu cementem dentystycznym.

Gdy cement wyschnie i stwardnieje, odłącz uchwyt elektrody od ramienia stereotaktycznego, podnieś ramię i zdejmij uchwyt z cokołu. Po podaniu myszy podskórnie ketoprofenu i normozolu, należy wyjąć zwierzę z ramy stereotaktycznej, aby przenieść zwierzę na podgrzewaną podkładkę w klatce wiwarium. Po pełnym wybudzeniu włóż pojedyncze zwierzę z powrotem do klatki wiwarium, karm je miękkim pokarmem i monitoruj utratę wagi codziennie do 72 godzin po operacji.

Related Videos

Operacja wszczepienia implantu ślimakowego i elektrycznie wywołane nagrania słuchowej odpowiedzi pnia mózgu u myszy C57BL/6

09:06

Operacja wszczepienia implantu ślimakowego i elektrycznie wywołane nagrania słuchowej odpowiedzi pnia mózgu u myszy C57BL/6

Related Videos

14.6K Views

Użycie elektrody bipolarnej do stworzenia mysiego modelu padaczki skroniowej poprzez elektryczne rozppalenie ciała migdałowatego

09:49

Użycie elektrody bipolarnej do stworzenia mysiego modelu padaczki skroniowej poprzez elektryczne rozppalenie ciała migdałowatego

Related Videos

3.1K Views

Obrazowanie wapnia w stymulowanych elektrycznie płaskich siatkówkach

07:25

Obrazowanie wapnia w stymulowanych elektrycznie płaskich siatkówkach

Related Videos

2.6K Views

Zapisy EEG o dużej gęstości swobodnie poruszających się myszy przy użyciu mikroelektrody na bazie poliimidu

06:59

Zapisy EEG o dużej gęstości swobodnie poruszających się myszy przy użyciu mikroelektrody na bazie poliimidu

Related Videos

38K Views

Implantacja elektrod do kory myszy w celu zapisów elektrokortykograficznych

03:59

Implantacja elektrod do kory myszy w celu zapisów elektrokortykograficznych

Related Videos

929 Views

Wstrzykiwana elektronika siatkowa do stabilnych zapisów pojedynczych neuronów w mózgu myszy

05:01

Wstrzykiwana elektronika siatkowa do stabilnych zapisów pojedynczych neuronów w mózgu myszy

Related Videos

488 Views

Wszczepienie bezprzewodowego dwukierunkowego systemu mikroelektrod do mózgu szczura

03:39

Wszczepienie bezprzewodowego dwukierunkowego systemu mikroelektrod do mózgu szczura

Related Videos

653 Views

Rejestrowanie aktywności elektrycznej mózgu u zachowujących się myszy za pomocą liniowych sond krzemowych z wieloma zębami

03:22

Rejestrowanie aktywności elektrycznej mózgu u zachowujących się myszy za pomocą liniowych sond krzemowych z wieloma zębami

Related Videos

646 Views

Wszczepianie układu elektrod i światłowodu do hipokampa myszy

02:51

Wszczepianie układu elektrod i światłowodu do hipokampa myszy

Related Videos

804 Views

Jednoczesne monitorowanie wideo-EEG-EKG w celu identyfikacji dysfunkcji neurosercowej w mysich modelach padaczki

11:54

Jednoczesne monitorowanie wideo-EEG-EKG w celu identyfikacji dysfunkcji neurosercowej w mysich modelach padaczki

Related Videos

26.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code