Izolacja białek powierzchniowych i wewnątrzkomórkowych z hodowli astrocytów

0 wyświetleń4:58 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weź kulturę astrocytów i usuń pożywkę. Dodaj bufor fizjologiczny i inkubuj na lodzie, hamując endocytozę białek powierzchniowych komórek.

Inkubować z odczynnikiem biotynylacyjnym, który wiąże białka na powierzchni komórki.

Następnie inkubować z buforem hartującym, aby dezaktywować nieprzereagowany odczynnik.

Dodaj zimny bufor fizjologiczny i mechanicznie odłącz komórki. Przenieś komórki, a następnie odwiruj i wyrzuć supernatant.

Inkubować z buforem do lizy w celu lizy komórek, uwalniając biotynylowane białka wewnątrzkomórkowe na powierzchni komórek i niebiotynylowane.

Odwirować, zebrać supernatant i oddzielić frakcję o całkowitej zawartości białka.

Pozostałą frakcję inkubować pod wpływem mieszania z kulkami pokrytymi streptawidyną, które wiążą biotynylowane białka.

Zakręć kulki związane z białkami na powierzchni komórki i oddziel supernatant zawierający białka wewnątrzkomórkowe.

Umyj kulki pod mieszaniem w celu usunięcia niespecyficznie związanych białek, a następnie odwiruj i wyrzuć supernatant, izolując białka na powierzchni komórki.

Frakcje zawierające białka całkowite, wewnątrzkomórkowe i powierzchniowe komórki są gotowe do analizy.

Aby rozpocząć tę procedurę, usuń kultury astrocytów z inkubatora i wyrzuć pożywkę przez aspirację. Umyj komórki trzykrotnie 4 mililitrami schłodzonego CM-PBS i umieść naczynia na pokruszonym lodzie.

Usunąć CM-PBS przez aspirację, a następnie odpipetować dwa mililitry buforu biotyny do każdej studzienki. Delikatnie przechyl naczynia kilka razy do przodu i do tyłu, aby zapewnić całkowite pokrycie przed umieszczeniem kultur na lodzie na 30 minut.

Następnie usuń bufor biotyny, zastąp go czterema mililitrami buforu hartującego i trzymaj kultury na lodzie przez 10 minut. Następnie odessać i zastąpić taką samą ilością buforu hartowniczego przed pozostawieniem kultur na lodzie na 10 minut.

Następnie wyrzuć bufor hartowniczy i przemyj komórki trzykrotnie 4 mililitrami schłodzonego CM-PBS. Następnie zeskrobać komórki do jednego mililitra schłodzonego CM-PBS i przenieść zawiesinę do probówki mikrowirówkowej.

Następnie granuluj komórki przez odwirowanie z prędkością 100 g przez trzy minuty w schłodzonej mikrowirówce ustawionej na 4 stopnie Celsjusza. Następnie wyrzuć supernatant i ponownie zawieś komórki w 500 mikrolitrach buforu do lizy.

Następnie pozostaw próbki na lodzie na 30 minut, wirując co pięć minut. Następnie odwiruj lizat w stężeniu 14 000 g przez 10 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza, aby osadzać wszelkie detergenty i materiały rozpuszczalne. Następnie przenieść supernatant do nowej probówki do mikrowirówki. Zaoszczędź 50 mikrolitrów lizatu i dodaj do niego 25 mikrolitrów 3x bufora ładującego.

Następnie denaturuj go poprzez podgrzanie do 95 stopni Celsjusza w suchej kąpieli. Jest to frakcja wejściowa zawierająca zarówno biotynylowane białka powierzchniowe komórek, jak i niebiotynylowane białka cytozolowe. Za pomocą wyciętej końcówki pipety przenieś 75 mikrolitrów kulek agarozy streptawidyny do lizatu i inkubuj w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez trzy godziny na shakerze.

Następnie granulować kulki agarozy streptawidyny przez odwirowanie w temperaturze 1500 g przez 30 sekund w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Zaoszczędź 50 mikrolitrów supernatantu i dodaj 25 mikrolitrów 3x bufora ładującego. Następnie denaturuj go w temperaturze 95 stopni Celsjusza w łaźni wodnej lub bloku grzewczym. Reprezentuje to frakcję wewnątrzkomórkową i składa się głównie z niebiotynylowanych białek cytozolowych.

Następnie ponownie zawieś granulowane kulki w jednym mililitrze bufora do mycia i kołysz go przez trzy minuty w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Granuluj kulki i wyrzuć supernatant. Powtórz ten proces jeszcze cztery razy, aby zminimalizować niespecyficzne wiązanie niebiotynylowanych białek cytozolowych.

Dodać 50 mikrolitrów buforu ładującego rozcieńczonego do 1x za pomocą buforu do lizy. Uwolnij biotynę i streptawidynę z kulek, denaturując je w temperaturze 95 stopni Celsjusza. Frakcja ta powinna zawierać wyłącznie biotynylowane białka powierzchniowe komórek.

09:12

Izolacja kłębuszków nerkowych i znakowanie in vivo białek powierzchniowych komórek kłębuszków nerkowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:31

Przepływ pracy "Cell Surface Capture" do ilościowego oznaczania proteomu powierzchni komórki bez znaczników

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:41

Izolacja astrocytów: metoda uzyskiwania czystego przygotowania astrocytów korowych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:51

Prosta technika izolacji i hodowli mysich astrocytów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:16

Ocena internalizacji docelowych białek powierzchniowych za pomocą pochodnej biotyny

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:25

Izolacja i hodowla astrocytów korowych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:54

Szybka i udoskonalona izolacja magnetyczna CD11b pierwotnego mikrogleju o zwiększonej czystości i wszechstronności

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:42

Określanie ekspresji białek na powierzchni komórki i szybkości endocytów w pierwotnych kulturach astrocytów za pomocą biotynylacji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:19

Wizualizacja i analiza transportu wewnątrzkomórkowego organelli i innych ładunków w astrocytach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:18

Izolacja populacji astrocytów dorosłych ludzi ze świeżo zamrożonej kory mózgowej przy użyciu sortowania jąder aktywowanych fluorescencją

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026