Immunoprecypitacja docelowych kompleksów białko-DNA z lizatu neuronu ruchowego

0 wyświetleń2:55 min • July 8th, 2025

Zacznij od probówki zawierającej wstępnie obrobione kulki magnetyczne pokryte przeciwciałami specyficznymi dla docelowego białka usieciowanego z DNA.

Dodać lizat neuronu ruchowego zawierający fragmenty DNA i inkubować z mieszaniem.

Fragmenty DNA oddziałują z kulkami pokrytymi przeciwciałami, tworząc kompleksy koraliko-DNA.

Odwirować, aby zebrać ciecz z nasadki i umieścić ją na separatorze magnetycznym w celu wytrącenia kompleksów perełka-DNA.

Usunąć supernatant zawierający niezwiązane fragmenty DNA.

Wprowadź bufor do lizy na bazie detergentu, aby rozpuścić niespecyficznie związane fragmenty DNA.

Odwirować i przeprowadzić separację magnetyczną, a następnie usunąć supernatant.

Umyj buforem o wysokiej zawartości soli, aby zakłócić niespecyficzne interakcje. Odwirować, przeprowadzić separację magnetyczną i usunąć supernatant.

Przemyć buforem LiCl, aby usunąć pozostałe niespecyficzne interakcje. Odwirować, przeprowadzić separację magnetyczną i usunąć supernatant.

Na koniec przemyć buforem Tris-HCl, odwirować i przeprowadzić separację magnetyczną.

Usunąć supernatant i zebrać kulki zawierające docelowe kompleksy białko-DNA.

Aby rozpocząć immunoprecypitację chromatyny, umyj kulki pokryte przeciwciałem w 1 mililitrze roztworu blokującego. Umieść probówkę zawierającą kulki pokryte przeciwciałem na platformie kołyszącej w temperaturze 4 stopni Celsjusza na 5 minut. Po krótkim odwirowaniu umieść probówkę na stojaku magnetycznym i usuń supernatant.

Zawiesić kulki pokryte przeciwciałem w 50 mikrolitrach roztworu blokującego. Dodaj 1 mililitr sonikowanych lizatów do kulek pokrytych przeciwciałami. Następnie inkubuj próbkę na platformie kołyszącej się w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez noc. Po pozostawieniu próbki do inkubacji przez noc, zebrać płyn z nakrętki, krótko obracając probówkę. Następnie umieść probówkę na stojaku magnetycznym i po 1 minucie ostrożnie usuń supernatant za pomocą pipety.

Następnie wykonaj serię prań w następujący sposób. Dodać do próbki 1 mililitr buforu do płukania na zimno zawierającego CPI. Mieszać próbkę na platformie kołyszącej w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 5 minut. Krótko obrócić probówkę z próbką. Następnie umieść na stojaku magnetycznym. Po 1 minucie usunąć supernatant za pomocą pipety.

10:43

Mapowanie całego genomu interakcji białko-DNA z sekwencją ChEC u Saccharomyces cerevisiae

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:31

Natywna immunoprecypitacja chromatyny przy użyciu mysich neurosfer guza mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:50

Immunoprecypitacja chromatyny mysiej brunatnej tkanki tłuszczowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:50

Izolacja nietrwałych kompleksów wielobiałkowych za pomocą kontrolowanego sieciowania komórkowego in vivo oraz immunomagnetycznej chromatografii powinowactwa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:41

Immunoprecypitacja chromatyny z tkanki zwojów korzeni grzbietowych po uszkodzeniu aksonalnym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:25

Izolacja i hodowla embrionalnych motoneuronów myszy z wykorzystaniem lektyn

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:29

Test immunoprecypitacji chromatyny: technika badania interakcji białko-DNA w komórkach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:57

Trawienie białek na błonie w celu przygotowania białek współimmunoprecypitowanych do badań interakcji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:47

Identyfikacja interaktomii MyoD za pomocą tandemowego oczyszczania powinowactwa sprzężonego ze spektrometrią mas

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:53

Izolacja pokrewnych kompleksów RNA-białko z komórek za pomocą elucji kierowanej oligonukleotydami

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026