Różnicowanie i dojrzewanie ludzkich embrionalnych komórek macierzystych do organoidów nerwowych

0 wyświetleń3:52 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od ludzkich embrionalnych komórek macierzystych w pożywce hodowlanej.

Inkubuj w celu proliferacji komórek i tworzenia kul.

Przenieś te kulki do nowej studni z podłożem zawierającym czynniki różnicujące.

Inkubować z delikatnym potrząsaniem. Czynniki różnicujące kierują komórki macierzyste w kierunku linii nerwowej.

Regularnie wymieniaj połowę podłoża.

Zastąp pożywkę pożywką do indukcji neuronów, a następnie inkubuj, aby uzyskać neuronalne komórki progenitorowe.

Przełącz się na pożywkę bogatą w czynnik wzrostu i inkubuj, aby promować proliferację komórek i tworzenie rozety nerwowej.

Następnie hoduj w pożywce zawierającej inhibitory w celu zablokowania niepożądanego różnicowania komórek.

Zastąp tę pożywkę pożywką zawierającą czynniki wzrostu i inhibitory. Inkubuj w celu wywołania różnicowania w komórki glejowe i neurony pierwotne.

Później umieść rozety nerwowe na membranie hydrofobowej w studzience przenoszącej wkładkę zawierającej pożywkę dojrzewającą bogatą w inhibitory.

Inkubować bez wstrząsania, aby umożliwić dojrzewanie komórek nerwowych i glejowych na granicy faz powietrze-ciecz, tworząc organoidy nerwowe.

Dozować 1 000 tysięcy komórek na mikrostudzienkę. Odwirować komórki w temperaturze 300 razy g przez 5 minut i sprawdzić pod mikroskopem jednorodny ponowny podział komórek na płytce mikrodołkowej. Umieść płytkę w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza na noc.

Następnego dnia zbadaj płytkę mikrostudzienki, aby sprawdzić rozmiar uformowanych kulek w każdej mikrostudzience. Przenieś kulki na sześciodołkową płytkę za pomocą pożywki, uzupełnionej podwójnym koktajlem hamującym SMAD, aby promować szybką indukcję neuronalną. Od tego kroku naprzód kule są hodowane w ruchu obrotowym z prędkością 60 obr./min, aby zapobiec ich sklejaniu się ze sobą lub do płyty. W dniach od 1 do 4 zmieniaj pożywkę co dwa do trzech dni przed wykonaniem indukcji neuronalnej.

Od 4 do 11 dnia promuj proliferację rozet nerwowych pochodzących z hESC, dodając EGF i bFGF w ilości 10 nanogramów na mililitr do pożywki B27, uzupełnionej podwójnym koktajlem SMAD. Od 11 do 13 dnia hoduj kulki w pożywce B27, uzupełnionej 0,5 mikromolowym inhibitorem BMP. Od 13 do 21 dnia hodować kulki w pożywce B27 uzupełnionej GDNF i BDNF w dawce 10 nanogramów na mililitr i 1 mikromolowym inhibitorze gamma-sekretazy.

W dniu 21 umieść jedną wkładkę płytki hodowlanej w jednym dołku nowej płytki sześciodołkowej. Następnie dodaj 1 mililitr pożywki B27, uzupełnionej czynnikami wzrostu i inhibitorami do każdej studzienki pod wkładką membranową. Następnie ułóż kulki na hydrofilowej membranie PTFE osadzonej na wkładce płytki hodowlanej i zmieniaj pożywkę co dwa do trzech dni przez kolejne trzy tygodnie różnicowania. Zatrzymaj obrót od tego kroku.

Obecność rozet wskazuje na inicjację różnicowania neuronalnego. Od 21 do 25 dnia hoduj ludzkie organoidy nerwowe w tym samym pożywce do dojrzewania nerwowego. Następnie, od 25 do 28 dnia, uzupełnij pożywkę B27 tylko jednym mikromolowym inhibitorem gamma-sekretazy. Od 28 do 39 dnia należy przerwać dodawanie inhibitora gamma-sekretazy i kontynuować hodowlę ludzkich organoidów nerwowych wyłącznie w pożywce B27. Po trzech tygodniach organoidy nerwowe są gotowe do użycia do implantacji GIC.

08:45

Postępowanie z ludzką pierwotną hodowlą organoidów gruczołu krokowego i ich ocena

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:58

Ludzki model organoidowy przeszczepu komórek nerwowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:03

Generowanie siatkówki nerwowej z ludzkich pluripotencjalnych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:55

Wytwarzanie dopaminergicznych organoidów neuronalnych z ludzkich embrionalnych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:25

Generowanie standaryzowanych i powtarzalnych organoidów mózgowych typu przodomózgowia z ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:36

Ludzkie organoidy nerwowe do badania raka mózgu i chorób neurodegeneracyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:30

Statyczna, samosterowna metoda generowania organoidów mózgowych z ludzkich embrionalnych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:17

Efektywne różnicowanie neuronalne przy użyciu hodowli jednokomórkowej ludzkich embrionalnych komórek macierzystych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:19

Modele 2D i 3D oparte na pluripotencjalnych komórkach macierzystych indukowanych przez człowieka do analizy pierwotnego zaangażowania rzęsek podczas rozwoju kory nowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:16

Wytwarzanie organoidów mózgowych z indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych w domowych mini bioreaktorach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026