Barwienie immunofluorescencyjne sialoglykoprotein w neuronalnych komórkach progenitorowych i neuronach

0 wyświetleń3:27 min • July 8th, 2025

Weźmy pierwotne nerwowe komórki macierzyste i progenitorowe oraz neurony, które mają sialoglykoproteiny oznaczone przez reporter kwasu sjalowego.

Dodaj paraformaldehyd, aby utrwalić komórki. Usunąć nadmiar paraformaldehydu za pomocą buforu.

Inkubować z mieszaniną reakcyjną zawierającą sondy chemiczne na bazie biotyny, środek redukujący i katalizator na bazie metalu.

Środek redukujący aktywuje katalizator, ułatwiając biotynylację sialoglykoprotein.

Usunąć mieszaninę reakcyjną i przemyć buforem. Dodać streptawidynę sprzężoną z fluoroforem, aby związać biotynylowane sialoglykoproteiny.

Usunąć niezwiązaną streptawidynę i przemyć buforem. Dodaj białka i niejonowy detergent, aby zablokować niespecyficzne miejsca i przepuszczalność komórek.

Usuń ten roztwór i inkubuj z pierwszorzędowymi przeciwciałami skierowanymi przeciwko określonym białkom komórkowym.

Usunąć niezwiązane przeciwciała.

Inkubować z przeciwciałami drugorzędowymi znakowanymi fluoroforem i barwnikiem fluorescencyjnym, aby związać przeciwciała pierwszorzędowe związane z białkiem i znakować jądra.

Usuń niezwiązane cząsteczki. Umyć buforem.

Za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej zobrazuj komórki, aby uwidocznić fluorescencyjne sjalolikoproteiny i białka komórkowe.

Najpierw usuń wkładki z płytek kokultury i zaaspiruj pożywkę hodowlaną z dna studzienek. Następnie umyj komórki nerwowe raz podgrzanym PBS. Odessać PBS ze studzienek i dodać 1 mililitr wstępnie schłodzonego 4% paraformaldehydu w PBS do każdej studzienki.

Utrwal komórki w temperaturze pokojowej przez 10 minut. Następnie umyj komórki trzykrotnie schłodzonym PBS. Odessać PBS i dodać 1 mililitr świeżo przygotowanego buforu I sprzężonego z biotyną do każdej studzienki. Inkubować w temperaturze pokojowej przez 10 minut. Następnie odessać bufor reakcyjny ze studzienek i trzykrotnie przemyć komórki PBS. Dodaj 1 mililitr buforu barwiącego do każdej studzienki komórek i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 30 minut.

Następnie odessać bufor barwiący ze studzienek i trzykrotnie przemyć komórki wstępnie schłodzonym PBS. Dodaj 1 mililitr buforu blokującego do każdej studzienki komórek i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 10 minut. Usuń bufor blokujący z dołków i dodaj 1 mililitr roztworu przeciwciał pierwszorzędowych do każdej studzienki. Inkubuj komórki przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza.

Następnego dnia usuń pierwszorzędowy roztwór przeciwciała z dołków. Umyj komórki trzykrotnie wstępnie schłodzonym PBS. Odessać PBS z dołków i dodać 1 mililitr przeciwciała wtórnego do każdej studzienki. Inkubować komórki w temperaturze pokojowej przez dwie godziny. Następnie odessać roztwór ze studzienek i trzykrotnie umyć komórki wstępnie schłodzonym PBS.

06:47

Ocena pierwotnej neurogenezy w zarodkach Xenopus za pomocą barwienia immunologicznego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:42

Ulepszona technika walcowania szwajcarskiego do przygotowania tkanki jelitowej do analiz immunohistochemicznych i immunofluorescencyjnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:46

Kriowycinki siatkówki, całe wierzchowania i hipotoniczne izolowane preparaty naczyniowe do immunohistochemicznej wizualizacji perycytów mikronaczyniowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

15:40

Analiza neuroblastów: metoda generowania i wzbogacania populacji neuronalnych komórek progenitorowych z różnicujących się potomków neuronalnych komórek macierzystych z wykorzystaniem cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:26

System hodowli oligodendrocytów pochodnych z komórek progenitorowych ludzkiego płodu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:18

Technika barwienia immunofluorescencyjnego do wykrywania neurogenezy hipokampa u dorosłych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:59

Barwienie immunofluorescencyjne do wizualizacji rozproszyłych nerwowych komórek macierzystych w wycinkach mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:58

Barwienie immunofluorescencyjne populacji neuronów w embrionalnym mysim przewodzie pokarmowym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:04

Barwienie immunologiczne neuronów w wycinkach mózgu myszy po fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

01:48

Mikroskopia immunofluorescencyjna komórek nerwowych zróżnicowanych z obwodowych komórek krwiopochodnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026