Przygotowanie hodowanych neuronów do analizy optycznej przetworzonych pęcherzyków synaptycznych

0 wyświetleń4:53 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od szkiełka nakrywkowego zawierającego hodowane neurony wyrażające białka błony pęcherzyków synaptycznych, w tym znakowaną fluorescencyjnie synaptofizynę i synaptotagminę-1.

Usuń pożywkę, dodaj mieszaninę buforu depolaryzacyjnego i przeciwciał pierwszorzędowych, a następnie inkubuj.

Jony buforowe dostają się do komórek, stymulując fuzję pęcherzyków synaptycznych z błoną, która odsłania synaptotagminę-1.

Pierwszorzędowe przeciwciała selektywnie wiążą się z eksponowaną synaptotagminą-1.

Odrzucić bufor i przemyć pożywką w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał.

Wprowadzić świeżą pożywkę i inkubować, aby ułatwić internalizację błony, tworząc pęcherzyki z recyklingu ze znakowaną synaptofizyną i synaptotagminą-1 związaną z przeciwciałami.

Usuń pożywkę, utrwal komórki i umyj.

Wprowadzić bufor blokujący na bazie detergentu z przeciwciałami drugorzędowymi sprzężonymi z fluoroforem.

Detergent przenika do komórek, umożliwiając przeciwciałom drugorzędowym interakcję z synaptotagminą-1 związaną z przeciwciałami.

Podnieś szkiełko nakrywkowe, umyj je wodą i wysusz.

Umieść szkiełko nakrywkowe stroną zadrukowaną do dołu na szkiełku podstawowym do analizy optycznej podwójnie znakowanych pęcherzyków pochodzących z recyklingu.

Podgrzej 600 mikrolitrów 1x buforu depolaryzacyjnego i 10 mililitrów pożywki do hodowli komórkowych do 37 stopni Celsjusza w łaźni wodnej. Dodaj 1 mikrolitr mysiego przeciwciała anty-SYT1 do bufora depolaryzacyjnego 1x i wiruj przez 10 sekund. Po usunięciu i odrzuceniu pożywki do hodowli komórkowych z komórek, dodaj 200 mikrolitrów mieszanki przeciwciał depolaryzacyjnych do każdej studzienki.

Inkubować płytkę przez 5 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% CO2 w inkubatorze. Usuń i wyrzuć mieszaninę przeciwciał depolaryzacyjnych i trzykrotnie umyj komórki pożywką do hodowli komórkowych. Dodaj 1 mililitr pożywki do hodowli komórkowych do każdej studzienki i inkubuj przez 30 sekund w temperaturze pokojowej.

Następnie usuń 750 mikrolitrów pożywki i dodaj taką samą ilość świeżego podłoża. Powtórz ten proces trzy razy. Następnie usuń i wyrzuć pożywkę do hodowli komórkowych i dodaj 300 mikrolitrów 4% PFA w 1x PBS.

Na koniec inkubować przez 20 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza, a następnie myć trzy razy po 5 minut, każdy z 1x PBS. Rozcieńczyć drugorzędowe przeciwciało sprzężone z fluoroforem w 200 mikrolitrach buforu blokującego dla każdej studzienki w rozcieńczeniu od 1 do 1,000. Usuń i wyrzuć 1x PBS z każdej studzienki zawierającej szkiełka nakrywkowe z hodowanymi neuronami.

Dodaj 200 mikrolitrów mieszaniny przeciwciał blokujących bufor do każdej studzienki i inkubuj przez 60 minut w temperaturze pokojowej. Po inkubacji umyj komórki trzy razy przez 5 minut 1 mililitrem 1x PBS.

Następnie dodaj 7-mikrolitrową kroplę pożywki do zatapiania na szkiełko mikroskopowe. Usuń szkiełko nakrywkowe z płytki 24-dołkowej, podnosząc je kaniulą i chwytając kleszczami. Zanurz szkiełko nakrywkowe w wodzie destylowanej, aby usunąć PBS, i ostrożnie wysusz, dotykając jedną krawędzią miękkiej tkanki.

Odwróć szkiełko nakrywkowe na kroplę podłoża do zatapiania tak, aby powierzchnia zawierająca komórki była skierowana w stronę szkiełka mikroskopowego, osadzając w ten sposób komórki w podłożu do zatapiania. Pozostaw szkiełka do wyschnięcia pod maską na jedną do dwóch godzin, przykrywając je, aby uniknąć ekspozycji na światło. Wysuszone szkiełka należy przechowywać w pojemniku na szkiełka mikroskopowe w temperaturze 4 stopni Celsjusza.

07:30

Pomiar endocytozy pęcherzyków synaptycznych w hodowanych neuronach hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:31

Cykl barwnika FM w synapsie: porównanie wysokiej depolaryzacji potasu, stymulacji elektrycznej i rodopsyny kanałowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:51

Test oparty na mikroskopii do badania i analizy endosomów recyklingu przy użyciu transportu SNARE

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

18:11

Kwantyfikacja synaps: test oparty na immunocytochemii do ilościowego określania liczby synaps

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:38

Wibrodysocjacja neuronów z wycinków mózgu gryzoni w celu zbadania transmisji synaptycznej i obrazu zakończeń presynaptycznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:48

Analiza morfologii dendrytycznych kręgosłupów w hodowanych neuronach OUN

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:02

Analiza ilościowa uzupełniania puli pęcherzyków synaptycznych w hodowanych neuronach ziarnistych móżdżku przy użyciu barwników FM

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:58

Dyfuzja boczna i egzocytoza białek błonowych w hodowanych neuronach oceniana za pomocą odzyskiwania fluorescencji i fotowybielania utraty fluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:10

Badanie recyklingu pęcherzyków synaptycznych za pomocą barwników FM podczas wywołanych, spontanicznych i miniaturowych aktywności synaptycznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:30

Obrazowanie w superrozdzielczości pęcherzyków neuronalnych o gęstym rdzeniu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026