$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Zacznij od szkiełka nakrywkowego zawierającego hodowane neurony wyrażające białka błony pęcherzyków synaptycznych, w tym znakowaną fluorescencyjnie synaptofizynę i synaptotagminę-1.
Usuń pożywkę, dodaj mieszaninę buforu depolaryzacyjnego i przeciwciał pierwszorzędowych, a następnie inkubuj.
Jony buforowe dostają się do komórek, stymulując fuzję pęcherzyków synaptycznych z błoną, która odsłania synaptotagminę-1.
Pierwszorzędowe przeciwciała selektywnie wiążą się z eksponowaną synaptotagminą-1.
Odrzucić bufor i przemyć pożywką w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał.
Wprowadzić świeżą pożywkę i inkubować, aby ułatwić internalizację błony, tworząc pęcherzyki z recyklingu ze znakowaną synaptofizyną i synaptotagminą-1 związaną z przeciwciałami.
Usuń pożywkę, utrwal komórki i umyj.
Wprowadzić bufor blokujący na bazie detergentu z przeciwciałami drugorzędowymi sprzężonymi z fluoroforem.
Detergent przenika do komórek, umożliwiając przeciwciałom drugorzędowym interakcję z synaptotagminą-1 związaną z przeciwciałami.
Podnieś szkiełko nakrywkowe, umyj je wodą i wysusz.
Umieść szkiełko nakrywkowe stroną zadrukowaną do dołu na szkiełku podstawowym do analizy optycznej podwójnie znakowanych pęcherzyków pochodzących z recyklingu.
Podgrzej 600 mikrolitrów 1x buforu depolaryzacyjnego i 10 mililitrów pożywki do hodowli komórkowych do 37 stopni Celsjusza w łaźni wodnej. Dodaj 1 mikrolitr mysiego przeciwciała anty-SYT1 do bufora depolaryzacyjnego 1x i wiruj przez 10 sekund. Po usunięciu i odrzuceniu pożywki do hodowli komórkowych z komórek, dodaj 200 mikrolitrów mieszanki przeciwciał depolaryzacyjnych do każdej studzienki.
Inkubować płytkę przez 5 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% CO2 w inkubatorze. Usuń i wyrzuć mieszaninę przeciwciał depolaryzacyjnych i trzykrotnie umyj komórki pożywką do hodowli komórkowych. Dodaj 1 mililitr pożywki do hodowli komórkowych do każdej studzienki i inkubuj przez 30 sekund w temperaturze pokojowej.
Następnie usuń 750 mikrolitrów pożywki i dodaj taką samą ilość świeżego podłoża. Powtórz ten proces trzy razy. Następnie usuń i wyrzuć pożywkę do hodowli komórkowych i dodaj 300 mikrolitrów 4% PFA w 1x PBS.
Na koniec inkubować przez 20 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza, a następnie myć trzy razy po 5 minut, każdy z 1x PBS. Rozcieńczyć drugorzędowe przeciwciało sprzężone z fluoroforem w 200 mikrolitrach buforu blokującego dla każdej studzienki w rozcieńczeniu od 1 do 1,000. Usuń i wyrzuć 1x PBS z każdej studzienki zawierającej szkiełka nakrywkowe z hodowanymi neuronami.
Dodaj 200 mikrolitrów mieszaniny przeciwciał blokujących bufor do każdej studzienki i inkubuj przez 60 minut w temperaturze pokojowej. Po inkubacji umyj komórki trzy razy przez 5 minut 1 mililitrem 1x PBS.
Następnie dodaj 7-mikrolitrową kroplę pożywki do zatapiania na szkiełko mikroskopowe. Usuń szkiełko nakrywkowe z płytki 24-dołkowej, podnosząc je kaniulą i chwytając kleszczami. Zanurz szkiełko nakrywkowe w wodzie destylowanej, aby usunąć PBS, i ostrożnie wysusz, dotykając jedną krawędzią miękkiej tkanki.
Odwróć szkiełko nakrywkowe na kroplę podłoża do zatapiania tak, aby powierzchnia zawierająca komórki była skierowana w stronę szkiełka mikroskopowego, osadzając w ten sposób komórki w podłożu do zatapiania. Pozostaw szkiełka do wyschnięcia pod maską na jedną do dwóch godzin, przykrywając je, aby uniknąć ekspozycji na światło. Wysuszone szkiełka należy przechowywać w pojemniku na szkiełka mikroskopowe w temperaturze 4 stopni Celsjusza.