Immunohistochemia do identyfikacji regionu miejsca sinawyego w wycinkach mózgu myszy

0 wyświetleń3:14 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Regiony miejsca sinawego, zlokalizowane obustronnie w pniu mózgu myszy, zawierają neurony wytwarzające noradrenalinę i regulują różne regiony w mózgu.

Aby wykryć te obszary miejsca sinawego, zacznij od szklanego szkiełka zawierającego nieruchome, kriokonserwowane sekcje pnia mózgu myszy.

Umyj szkiełko buforem w celu usunięcia śladów utrwalających.

Dodaj bufor zawierający detergent i inkubuj, aby przepuszczalność membran, a następnie umyć.

Wprowadź pierwotne przeciwciała specyficzne dla enzymu β-hydroksylazy dopaminy, który przekształca dopaminę w noradrenalinę, neuroprzekaźnik.

Inkubować, aby umożliwić przeciwciałom interakcję z dopaminą β-hydroksylazą.

Umyć w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał.

Następnie dodaj zielone przeciwciała drugorzędowe sprzężone z fluoroforem i inkubuj w ciemności.

Przeciwciała drugorzędowe wiążą się z przeciwciałami pierwszorzędowymi, a następnie myją.

Dodaj pożywkę montażową do sekcji mózgu, a następnie przykryj i wysusz.

Obserwuj szkiełka pod mikroskopem fluorescencyjnym.

Zielona fluorescencja reprezentująca znakowane neurony wytwarzające noradrenalinę w sekcjach mózgu wskazuje na obecność regionów miejsca sinawego.

Pierwszego dnia umyj plastry mózgu na 24-dołkowej płytce 3 razy po 5 minut każdy w PBS. Następnie dodaj 0,5% PBS z detergentem i przepuszczaj je w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 24 godziny.

Następnego dnia umyj plastry trzy razy po 5 minut za pomocą 0,5% PBSD. Następnie dodać przeciwciało pierwszorzędowe w rozcieńczeniu od 1 do 500 w 0,5% PBSD i inkubować w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 18 godzin.

Trzeciego dnia umyj plastry 3 razy po 10 minut z 0,5% PBSD. Następnie dodać przeciwciało drugorzędowe w rozcieńczeniu od 1 do 1000 w 0,5% PBSD. Owiń płytkę folią aluminiową i inkubuj w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 16 godzin.

Po inkubacji myć plastry 3 razy po 5 minut z 0,5% PBSD, a następnie przez 5 minut w PBS. Zakryj sekcje za pomocą twardego medium montażowego bez DAPI. Przykryj szklaną pokrywą i susz przez 30 minut w temperaturze pokojowej. Następnie użyj mikroskopu konfokalnego z ustawieniami do wykrywania sygnału o odpowiedniej długości fali fluorescencji, aby zobrazować wycinki mózgu.

07:26

Ocena zmian związanych ze źrenicami w pobudzeniu za pośrednictwem miejsca sinawy, wywołanym stymulacją nerwu trójdzielnego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:36

Połączenie hybrydyzacji fluorescencji in situ multipleksowej z immunohistochemią fluorescencyjną na świeżo zamrożonych lub utrwalonych wycinkach mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:38

Wykrywanie nieprawidłowego białka prionowego za pomocą immunohistochemii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:47

Przygotowanie tkanki mózgu myszy do immunoelektromikroskopii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:58

Immunohistochemiczne barwienie włókien nerwowych w jądrze podstawnym Meynera mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:42

Immunohistochemia wycinków tkanki mózgowej myszy do celowania w neurony dopaminowe

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:04

Barwienie immunologiczne neuronów w wycinkach mózgu myszy po fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:30

Podstawa immunohistochemii na kriowyciętej tkance mózgowej szczura: przykładowe barwienie mikrogleju i neuronów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:19

Stereologiczne oszacowanie liczby neuronów dopaminergicznych w istocie czarnej myszy przy użyciu frakcjonatora optycznego i standardowego sprzętu mikroskopowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:44

Lokalizacja miejsca sinawyego w mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026