Sieciowanie neuronalnych białek powierzchniowych w mózgu myszy za pomocą chemicznego testu sieciowania

0 wyświetleń3:47 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od odizolowanego mózgu myszy w lodowatym buforze.

Przenieś mózg do macierzy mózgowej, stroną brzuszną skierowaną do góry.

Włóż żyletki, aby seryjnie przeciąć przednią część mózgu.

Podnieś plastry, trzymając ostrza razem, pozostawiając tylną część z tyłu. Oddziel żyletki i umieść je na chłodnej powierzchni plasterkami mózgu skierowanymi do góry.

Wybierz żądany plasterek i wyodrębnij interesujący go obszar.

Podziel i zmiel tkankę.

Przenieś zmieloną tkankę do probówki zawierającej płyn mózgowo-rdzeniowy uzupełniony substancją chemiczną BS3.

Odwróć i wymieszaj probówkę, aby rozbić tkankę na mniejsze kawałki, a następnie inkubuj z rotacją.

BS3, substancja chemiczna nieprzepuszczalna dla błony komórkowej, sieciuje białka powierzchniowe neuronów, takie jak receptory GABA, podczas gdy wewnętrzne receptory GABA pozostają niezmienione.

Dodaj glicynę, aby wygasić reakcję sieciowania.

Próbka jest gotowa do oceny poziomów powierzchniowych receptorów GABA.

Na początek szybko usuń mózg z czaszki uśpionej myszy C57 black 6J. Zanurz go na szalce Petriego zawierającej lodowaty PBS na 10 do 15 sekund. Umieść schłodzony mózg w macierzy mózgowej na lodzie skierowanym brzuszną stroną do góry. Aby przeciąć mózg koronalnie, włóż pierwszą żyletkę przez granicę między opuszką węchową a szypułką węchową. Używając trzech do czterech dodatkowych żyletek, seryjnie przecinaj przednią część mózgu w odstępach 1 milimetra.

Przytrzymaj włożone żyletki razem, aby podnieść wycinki koronalne z macierzy mózgu, pozostawiając tylną część z tyłu. Za pomocą kleszczy oddziel żyletki od siebie i umieść je na płaskiej, schłodzonej powierzchni plasterkiem mózgu skierowanym do góry.

Aby pobrać próbkę kory przedczołowej, wybierz drugi i trzeci plasterek za pierwszym plasterkiem zawierającym szypułkę węchową. Za pomocą dziurkacza do tkanek lub kleszczy usuń żądany obszar. Połóż chusteczkę na schłodzonej żyletce i równomiernie podziel ją na dwie części. Użyj cienkiej końcówki kleszczy, aby zmielić każdą tkankę na kawałki na żyletce wieloma ruchami pionowymi. Do wstępnie schłodzonej, oznakowanej probówki zawierającej sztuczny płyn mózgowo-rdzeniowy należy dodać 30 mikrolitrów roztworu BS3. Następnie natychmiast przenieś zmielone tkanki do żądanej tuby.

Aby uzyskać reakcję sieciowania, odwróć probówkę zawierającą tkankę i roztwór, aby rozbić kawałki tkanki na małe kawałki. Inkubować próbki na rotatorze probówek w temperaturze 4 stopni Celsjusza przez 30 minut do 2 godzin i rejestrować czas rozpoczęcia inkubacji BS3 dla każdej probówki. Następnie wygasić reakcję 78 mikrolitrami 1 molowej glicyny. Inkubować dalej przez 10 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza ze stałą rotacją i zanotować czas rozpoczęcia i zakończenia hartowania.

11:57

Używanie znacznika miejsca wiązania α-bungarotoksyny do badania lokalizacji i transportu błony receptora GABA A

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:59

Wykorzystanie receptorów znakowanych pHluoryną do monitorowania lokalizacji subkomórkowej i transportu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:25

Testowanie przeciwciał przeciwko receptorom anty-RDL i anty-mGlutR1 w skrawkach mózgu pszczoły miodnej przy użyciu CRISPR-Cas9

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:59

Kwantyfikacja rozmieszczenia białka presynaptycznego w mózgu myszy za pomocą immunofluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:19

Znakowanie immunologiczne białek błony neuronalnej w pękniętej przez lód próbce tkanki mózgowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:28

Mikroskopia dwufotonowa do badania przyciągania procesów mikrogleju w kierunku związku w wycinku mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

14:02

Optymalizacja genetycznego włączenia sond chemicznych do GPCR w celu mapowania fotosieciowania i chemii bioortogonalnej w żywych komórkach ssaków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:55

Wielkoskalowe trójwymiarowe obrazowanie organizacji komórkowej w korze nowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:18

Kwantyfikacja niejednorodnego rozmieszczenia białka synaptycznego w mózgu myszy za pomocą immunofluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:27

Wskaźniki uwalniania i wychwytu glutaminianu w pojedynczych synapsach w ostrych wycinkach mózgu od myszy normalnych i myszy z chorobą Huntingtona

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026