JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 3:55 min • July 8th, 2025
Rozmrozić fragment zamrożonej tkanki mózgowej szczura.
Dodaj bufor i zmiel tkankę. Następnie przenieś go do probówki zawierającej bufor i wymieszaj.
Odwirować mieszaninę i wyrzucić supernatant.
Dodaj roztwór enzymu proteolitycznego do tkanki i ponownie go zawieś za pomocą pipety o dużej średnicy.
Inkubuj mieszaninę, aby rozbić macierz zewnątrzkomórkową, rozluźniając komórki nerwowe.
Odwirować mieszaninę i wyrzucić supernatant.
Ponownie zawiesić fragmenty tkanki w schłodzonym buforze i wielokrotnie je pipetować, aby zdysocjować komórki.
Poczekaj, aż zanieczyszczenia i niezdysocjowane komórki osiądą, a następnie przenieś zawiesinę jednokomórkową do nowej probówki.
Przenieś komórki do lodowatego etanolu i wymieszaj. Inkubuj je, aby utrwalić i przepuszczalnie komórki.
Odwirować zawiesinę i odrzucić supernatant.
Ponownie zawieś komórki nerwowe w zimnym buforze w celu dalszej analizy.
Aby zmielić tkankę, należy pozostawić próbki do rozmrożenia na zimnej szklanej płytce nie dłużej niż 1 minutę przed pokryciem próbek w jednej lub dwóch kroplach roztworu buforu A. Następnie, trzymając żyletkę całkowicie pionowo do płytki, zmiel tkankę 100 razy w każdym prostopadłym kierunku. Aby dokładnie zmielić tkankę, ważne jest, aby tkanka była mokra z buforem A i przestrzegała określonych czasów i wskazówek mielenia.
Bardzo ważne jest, aby usunąć większość istoty białej podczas rozwarstwiania tkanek i utrzymać tkankę pokrytą buforem A, aby poprawić wydajność mielenia i utrzymać zdrowie komórek.
Gdy tkanka zostanie dokładnie przetworzona, użyj żyletki, aby przenieść kawałki do probówki mikrowirówki zawierającej 1 mililitr zimnego buforu A i odwróć probówkę trzy do pięciu razy, aby zanurzyć całą zmieloną tkankę w roztworze. Aby zdysocjować fragmenty tkanek na zawiesinę pojedynczej komórki, próbki należy granulować przez odwirowanie.
Wyrzuć supernatant, a następnie powoli dodaj 1 mililitr zimnego, świeżo rozmrożonego roztworu enzymatycznego w dół wewnętrznej ścianki mikroprobówki i użyj pipety o dużej średnicy końcówki, aby natychmiast zassać i dozować całość każdej granulki cztery razy, aby rozproszyć zmielone kawałki tkanki. Następnie szybko odwróć mikroprobówkę, aby zapobiec przywieraniu granulek do dna probówki, i inkubuj próbkę z mieszaniem koniec po końcu przez 30 minut w temperaturze 4 stopni Celsjusza.
Pod koniec trawienia ponownie odwirować probówkę i dodać 0,6 mililitra zimnego buforu A do komórek. Używając tej samej końcówki do pipet, natychmiast zassaj i dozuj granulki pięć razy, a następnie wybierz szklaną pipetę o średnicy 1,3 milimetra i użyj jej do delikatnego miareczkowania próbek 10 razy.
Umieścić próbkę na lodzie na 2 minuty, aby umożliwić szczątkom i niezdysocjowanym komórkom osiądnięcie na dnie probówki. Następnie przenieś supernatant do nowej 15-mililitrowej probówki. Następnie przenieś 800 mikrolitrów komórek z pierwszej probówki zebranego supernatantu do każdej z pierwszych dwóch probówek etanolu.
Odwróć probówki, aby wymieszać próbki. Następnie umieścić próbki na lodzie na 15 minut z mieszaniem przez odwrócenie co 5 minut. Pod koniec inkubacji odwirować komórki. Następnie, dotykając tylko ścianki mikroprobówki, użyj mikropipety, aby powoli usunąć wszystkie oprócz ostatnich 50 mikrolitrów każdego supernatantu.
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje protokół izolacji komórek nerwowych z tkanki mózgu szczura. Proces obejmuje rozdrobnienie tkanki, trawienie enzymatyczne oraz dysocjację komórek w celu uzyskania zawiesiny pojedynczych komórek do dalszych analiz.
Uzyskanie wysokiej jakości zawiesiny pojedynczych komórek z zamrożonej tkanki mózgu szczura umożliwia przeprowadzenie dalszych analiz, takich jak cytometria przepływowa i analiza ekspresji genów, co wspiera walidację celów terapeutycznych oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego w procesie odkrywania leków w neurobiologii. Metoda ta zapewnia powtarzalny schemat przygotowania biologicznie istotnych układów neuronalnych z tkanek zarchiwizowanych lub pochodzących z biobanków, co ułatwia opracowywanie testów oraz kampanie przesiewowe fenotypowe. Dzięki zapewnieniu żywotności komórek i ograniczeniu zmienności próbek, protokół ten zwiększa pewność prognostyczną w decyzjach podejmowanych na wczesnych etapach odkrywania leków.
Metoda ta wpisuje się w proces odkryć, obejmujący etapy od walidacji celu, przez opracowanie testu, aż po przedkliniczne badania mechanistyczne, szczególnie w przypadku pracy z zamrożonymi lub archiwalnymi próbkami tkanek neuronowych.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026