Wywoływanie udaru istoty białej w modelu mysim przy użyciu inhibitora tlenku azotu

0 views • 5:15 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od znieczulonej myszy unieruchomionej w stereotaktycznej ramie z odsłoniętą czaszką.

Zaznacz bregmę, a następnie wywierć otwór, zaczynający się z tyłu przy bregmie i rozciągający się do przodu, tuż na lewo od linii środkowej.

Usuń warstwy tkanki, aby odsłonić zmielinowaną, bogatą w aksony korę mózgową i nałóż krople soli fizjologicznej, aby zapobiec wysuszeniu tkanek.

Przymocuj pipetę wypełnioną inhibitorem tlenku azotu do ramienia wtryskiwacza, które jest ustawione pod kątem w celu precyzyjnego wstrzyknięcia.

Dostosuj współrzędne stereotaktyczne i wstrzyknij inhibitor do istoty białej kory mózgowej, przytrzymując krótko pipetę, aby zapobiec przepływowi wstecznemu.

Wycofać się i powtórzyć wstrzyknięcie na innych współrzędnych.

Później uszczelnij otwór i zamknij nacięcie klejem.

Inhibitory wiążą się z enzymami wytwarzającymi tlenek azotu w komórkach śródbłonka naczyń krwionośnych, hamując produkcję tlenku azotu i zwężając naczynia krwionośne.

To zwężenie hamuje przepływ krwi, prowadząc do uszkodzenia neuronów i powstania zmian chorobowych, rozwijając udar istoty białej.

Zacznij od przymocowania wyciągniętej szklanej pipety do rurki podłączonej do przewodu próżniowego. Włóż pociągnięty koniec do roztworu L-Nio lub znacznika fluorescencyjnego L-Nio plus. Uruchom podciśnienie i zastosuj ssanie, aż co najmniej 2 milimetry z części pipety o średnicy 0,5 milimetra zostaną napełnione.

Odłóż napełnioną pipetę na bok. Następnie umieść mysz w aparacie stereotaktycznym wyposażonym w mikroskop stereotaktyczny. Po znieczuleniu i przygotowaniu myszy do zabiegu zgodnie z zatwierdzonymi procedurami, sprawdź głębokość znieczulenia za pomocą szczypania palca u nogi. Nie powinno być żadnej odpowiedzi.

Następnie ustaw ramię wtryskowe na 36 stopni. Przymocować wyciągnięty szklany uchwyt do pipet na dystalnym końcu systemu iniekcyjnego o niskim ciśnieniu objętości i przymocować go do ramienia iniekcyjnego. Po wykonaniu 1,5-centymetrowego nacięcia linii środkowej skóry głowy w celu odsłonięcia czaszki, osusz powierzchnię czaszki bawełnianym wacikiem.

Następnie, patrząc przez mikroskop stereotaktyczny w powiększeniu od 1 do 3x, użyj narzędzia do mikropunktowania, aby usunąć wszelkie leżące nad nią tkanki okostnej. Zaznacz bregma drobnym markerem, a następnie użyj wiertła chirurgicznego wyposażonego w wiertło chirurgiczne z cienką końcówką, aby wywiercić 2-milimetrową kraniotomię eliptyczną, zaczynając od tyłu od bregmy i rozciągając się do przodu tuż po lewej stronie linii środkowej.

Usuń fragmenty kości i leżące nad nimi tkanki miękkie, aby można było uwidocznić korę mózgową. Utrzymuj wilgotną powierzchnię kory mózgowej, stosując od czasu do czasu krople sterylnego roztworu soli fizjologicznej. Następnie przymocuj napełnioną pipetę do ramienia wtryskiwacza. Wyrównaj dystalny koniec pipety z bregmą i wyzeruj współrzędne stereotaktyczne.

Przesunąć pipetę do pierwszego punktu wstrzyknięcia, używając współrzędnych przednich, tylnych i przyśrodkowych bocznych podanych w tabeli 1. Następnie przesuń pipetę do powierzchni kory mózgowej i wyzeruj pomiar grzbietowo-brzuszny. Powoli opuść pipetę do współrzędnej grzbietowo-brzusznej.

Upewnij się, że powiększenie mikroskopu stereotaktycznego jest ustawione na 3X i że skalibrowana siatka celownicza jest wyraźnie widoczna. Spójrz na pipetę pod kątem z boku, tak aby menisk płynu powietrznego miał widok strzałkowy. Łąkotka powinna znajdować się w tej samej płaszczyźnie ogniskowej zarówno wewnętrznej, jak i zewnętrznej ścianki pipety.

Teraz, używając systemu wstrzykiwań o niskim ciśnieniu, ustawionego na 20 PSI dla impulsów 20 milisekund, wstrzyknij 100 nanolitrów L-Nio do mózgu. Po wstrzyknięciu całkowitej objętości należy odczekać 5 minut, aby zapobiec cofaniu się refluksu w górę ścieżki pipety. Następnie wyjąć pipetę i powtórzyć procedurę wstrzykiwania przy drugim i trzecim zestawie współrzędnych podanym w tabeli 1.

Po ostatnim wstrzyknięciu należy wyjąć pipetę i umieścić wystarczającą ilość wosku kostnego, aby wypełnić miejsce kraniotomii. Na koniec przybliż krawędzie rany skóry głowy i zwiąż za pomocą kleju skórnego.

10:05

DTI drogi wzrokowej - drogi istoty białej i zmiany w mózgu

Related Videos

0 Views

08:25

Modelowanie zawału torebki opisanej techniką fotozakrzepową

Related Videos

0 Views

09:41

Wstrzyknięcie hydrożelowych rusztowań biomateriałowych do mózgu po udarze mózgu

Related Videos

0 Views

09:40

Mysi model śródświetlnego MCAO: ocena zawału mózgu za pomocą barwienia fioletem krezylowym

Related Videos

0 Views

02:42

Wywoływanie udaru zakrzepowego poprzez niedotlenienie i niedokrwienie w modelu mysim

Related Videos

0 Views

08:14

Modelowanie udaru u myszy: trwała koagulacja dalszej tętnicy środkowej mózgu

Related Videos

0 Views

08:36

Wszechstronny mysi model podkorowego udaru istoty białej do badania zwyrodnienia aksonów i neurobiologii istoty białej

Related Videos

0 Views

09:08

Indukcja udaru niedokrwiennego i reperfuzji niedokrwiennej u myszy przy użyciu techniki niedrożności tętnicy środkowej i wizualizacji obszaru zawału

Related Videos

0 Views

06:59

Niedrożność tętnicy środkowej mózgu umożliwiająca reperfuzję poprzez wspólną naprawę tętnicy szyjnej u myszy

Related Videos

0 Views

07:26

Modelowanie udaru u myszy: przejściowe zamknięcie tętnicy środkowej mózgu przez tętnicę szyjną zewnętrzną

Related Videos

0 Views

Last updated: 1 August 2026