Charakterystyka sferoid guza neuroendokrynnego jelita cienkiego za pomocą immunofluorescencji

0 wyświetleń2:38 min • April 28th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weź sferoidy guza neuroendokrynnego jelita cienkiego w probówce.

Dodaj roztwór utrwalający, aby zachować komórki.

Aby umyć, odwirować i zastąpić utrwalacz buforem.

Odwirować i wyrzucić supernatant, aby usunąć resztki utrwalacza

.

Dodaj bufor zawierający detergent i środek blokujący, aby przepuszczalnie błony komórkowe i zapobiec wiązaniu się przeciwciał niespecyficznych.

Umyj buforem, aby usunąć nadmiar detergentu i środka blokującego.

Inkubuj z pierwotnymi przeciwciałami, które wiążą się z docelowym białkiem specyficznym dla komórki neuroendokrynnej.

Przemyć buforem, aby usunąć niezwiązane przeciwciała.

Dodaj przeciwciała drugorzędowe oznaczone fluoroforem, które wiążą się z przeciwciałami pierwszorzędowymi.

Spłukać buforem, aby usunąć nadmiar przeciwciał.

Dodaj podłoże montażowe zawierające barwnik, aby zabarwić jądro.

Przenieś sferoidy na szkiełko i zamontuj za pomocą szkiełka nakrywkowego.

Użyj mikroskopu fluorescencyjnego, aby uwidocznić komórki neuroendokrynne sferoidu wyrażające określone białka.

Napraw organoidy, dodając 500 mikrolitrów paraformaldehydu i inkubując je przez 15 minut. Po inkubacji przemyj kulturę dwukrotnie 1 mililitrem PBS. Dodaj 500 mikrolitrów PBS z 3% BSA i 0,1% Triton X-100, aby przeniknąć kulturę. Inkubować probówkę przez pięć minut, a następnie trzykrotnie umyć organoidy 1 mililitrem PBS i 3% BSA.

Następnie inkubuj kulturę z pierwotnymi przeciwciałami przez godzinę, a następnie powtórz płukanie z PBS i BSA. Inkubować z przeciwciałami drugorzędowymi i powtórzyć płukanie, upewniając się, że odessano i odrzucono cały supernatant.

Aby zobrazować sferoidy, dodaj 5 mikrolitrów podłoża montażowego zawierającego DAPI i użyj pipety P20, aby przenieść 5 mikrolitrów sferoid na szkiełko podstawowe. Uszczelnij szkiełko szkiełkiem nakrywkowym i zobrazuj za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego przy użyciu obiektywów 10, 20 i 40 razy.

05:54

Generowanie wysokoprzepustowych trójwymiarowych sferoid nowotworowych do badań przesiewowych leków

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:03

Fizjologiczne sferoidy 3D pochodzące od pacjenta do badań przesiewowych leków przeciwnowotworowych w celu ukierunkowania na rakowe komórki macierzyste

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:38

Ustalanie trójwymiarowych sferoid na podstawie próbek guza pochodzących od pacjentów i ocena ich wrażliwości na leki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:04

Ludzkie linie komórkowe guzów neuroendokrynnych jako trójwymiarowy model do badania terapii ludzkich guzów neuroendokrynnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:29

Barwienie immunofluorescencyjne sferoid: technika analizy sferoid pod kątem ekspresji wewnątrz- i zewnątrzkomórkowej ekspresji antygenu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:20

Dzielenie sferoid w celu hodowli i wysyłki: procedura rozmnażania i przenoszenia sferoid z guza neuroendokrynnego jelita cienkiego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:50

Podłużne monitorowanie morfologiczne i fizjologiczne trójwymiarowych sferoid nowotworowych za pomocą optycznej koherentnej tomografii

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:27

Model sferoidalny 3D jako bardziej fizjologiczny system do różnicowania i inwazji fibroblastów związanych z rakiem w badaniach in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:17

Charakterystyka wpływu inhibitorów migrastatycznych na inwazję sferoidalną guza 3D za pomocą mikroskopii konfokalnej o wysokiej rozdzielczości

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:43

Ustalenie i charakterystyka sferoid guza neuroendokrynnego jelita cienkiego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026