JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 4:06 min • April 28th, 2025
Weźmy chemicznie utrwalony wycinek mózgu myszy.
Dodać mieszaninę hybrydyzacyjną zawierającą czynnik permeabilizacyjny i sondy RNA znakowane FITC lub DIG.
Inkubować, aby umożliwić przenikanie komórek i wejście sondy.
Sondy wiążą się z komplementarnymi sekwencjami na mRNA MBP, markerze referencyjnym wszechobecnym wyrażanym w oligodendrocytach lub mRNA ASPA, celu.
Umyć, aby usunąć niezwiązane sondy.
Dodaj bufor blokujący, aby zapobiec wiązaniu się przeciwciał nieswoistych.
Wprowadzić przeciwciała anty-FITC sprzężone z HRP skierowane na sondę znakowaną FITC.
Umyć, a następnie dodać FITC-tyramide.
HRP utlenia tyramid FITC do wysoce reaktywnej formy, która wiąże się z pobliskimi białkami, wzmacniając sygnał fluorescencyjny.
Umyj i ponownie wprowadź bufor blokujący.
Dodaj przeciwciała anty-DIG sprzężone z fosfatazą alkaliczną skierowane na sondę znakowaną DIG.
Umyj i nałóż roztwór Fast Red.
Fosfataza alkaliczna defosforyluje Fast Red, wytwarzając fluorescencyjny osad.
Wizualizacja pod mikroskopem fluorescencyjnym.
Kolokalizacja sygnałów Mbp i ASPA wskazuje na ekspresję ASPA w oligodendrocytach.
Rozcieńczyć dwie sondy w buforze hybrydyzacyjnym, wstępnie podgrzanym do 65 stopni Celsjusza i dobrze wymieszać. Nałóż 300 mikrolitrów mieszanki hybrydyzacyjnej na każde szkiełko i przykryj szkiełkiem nakrywkowym wypieczonym w piekarniku. Następnie inkubuj szkiełka przez noc w temperaturze 65 stopni Celsjusza w wilgotnej komorze.
Następnego dnia przenieś szkiełka do słoika Coplin zawierającego wstępnie podgrzany bufor do mycia i myj szkiełka przez 30 minut, dwukrotnie w temperaturze 65 stopni Celsjusza. Następnie myj szkiełka przez 10 minut trzykrotnie roztworem myjącym MABT w temperaturze pokojowej.
Na tym etapie użyj hydrofobowego pisaka, aby narysować kółka wokół odcinków tkanki. Następnie inkubować szkiełka przez godzinę w temperaturze pokojowej z buforem blokującym ISH w wilgotnej komorze. Następnie inkubuj szkiełka przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza z przeciwciałem anty-FITC sprzężonym z peroksydazą chrzanową.
Następnie umieść szkiełka w słoiku Coplin zawierającym PBST. Umyj je w PBST trzy razy przez 10 minut za każdym razem i za każdym razem zastąp świeżym PBST. Następnie dodaj fluorescencyjny tyramid do szkiełek i pozostaw je na 10 minut w temperaturze pokojowej. Umieść szkiełka w słoiku Coplin i myj w PBST przez 10 minut trzy razy.
Następnie inkubować szkiełka z buforem blokującym ISH przez jedną godzinę w temperaturze pokojowej. Następnie inkubuj szkiełka przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza z przeciwciałem anty-DIG sprzężonym z fosfatazą alkaliczną. Następnie umyj je MABT trzy razy przez 10 minut za każdym razem. Następnie przemyj szkiełka dwukrotnie 0,1 molowym Tris-HCL o pH 8,2 przez pięć minut w temperaturze pokojowej.
Przefiltruj szybki czerwony roztwór i inkubuj szkiełka w temperaturze 37 stopni Celsjusza z szybkim czerwonym roztworem w wilgotnej komorze. Ponieważ czas optymalnego rozwoju jest różny, należy regularnie sprawdzać szkiełka za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego, aby monitorować tworzenie się osadu. Następnie umyj je trzy razy PBST przez 10 minut za każdym razem.
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje metodę wykrywania ekspresji mRNA w oligodendrocytach z wykorzystaniem mikroskopii fluorescencyjnej. Technika ta polega na hybrydyzacji sond RNA ze specyficznymi celami mRNA, a następnie na amplifikacji i wizualizacji sygnału.
Podwójna fluorescencyjna hybrydyzacja in situ (FISH) umożliwia precyzyjne mapowanie przestrzenne ekspresji genów w przekrojach mózgu myszy, co wspiera wczesne odkrywanie i walidację celów w badaniach i rozwoju (B+R) ukierunkowanych na neurobiologię. Zdolność tej metody do jednoczesnego wykrywania dwóch celów RNA z wysoką czułością zapewnia jasność mechaniczną i pewność prognostyczną w badaniu szlaków sygnalizacyjnych oraz analizie ekspresji specyficznej dla danego typu komórek. Możliwość ta jest kluczowa dla ograniczania ryzyka w odniesieniu do wybranych celów oraz dla podejmowania decyzji portfelowych w procesie odkrywania leków na schorzenia ośrodkowego układu nerwowego (CNS).
Niniejszy protokół podwójnej hybrydyzacji in situ fluorescencyjnej (FISH) wpisuje się w kontinuum od etapu odkryć do badań przedklinicznych, umożliwiając weryfikację hipotez dotyczących ekspresji genów in situ, co pozwala na optymalizację wyboru celów terapeutycznych oraz strategii biomarkerowych.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026