$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weźmy uwodnioną, osadzoną, utrwaloną i przepuszczalną w żelu fibrynowym chorą tkankę włóknisto-naczyniową pochodzącą od pacjenta. Tkanka ta zawiera nieregularne struktury neowaskularne z komórkami śródbłonka i perycytami.
Potraktuj tkankę roztworem blokującym, aby zapobiec wiązaniu się nieswoistych przeciwciał.
Inkubować z pierwszorzędowymi przeciwciałami skierowanymi przeciwko białkom powierzchniowym na komórkach śródbłonka i perycytach.
Przepłukać buforem w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał, a następnie inkubować w buforze.
Po przepłukaniu buforem inkubować z przeciwciałami drugorzędowymi sprzężonymi z barwnikiem fluorescencyjnym, aby związać się z przeciwciałami pierwszorzędowymi.
Przemyć buforem w celu usunięcia nadmiaru przeciwciał i inkubować w buforze.
Po przepłukaniu buforem dodaj barwnik jądrowy, aby wybarwić jądra komórkowe. Spłucz buforem i wodą dejonizowaną, aby usunąć niezwiązany barwnik.
Przenieś tkankę na szkiełko mikroskopowe.
Nałożyć media montażowe i uszczelnić szkiełkiem nakrywkowym zawierającym szybkoutwardzalne media montażowe.
Po wyschnięciu na powietrzu przechowuj szkiełko w niskiej temperaturze. Następnie zobrazuj tkankę pod mikroskopem epifluorescencyjnym, aby uwidocznić przestrzenne rozmieszczenie komórek śródbłonka i perycytów w strukturach neowaskularnych.
Przechyl płytkę na podporze i inkubuj kropelki w 500 mikrolitrach roztworu blokującego przez dwie godziny w temperaturze pokojowej. Przygotować mieszaninę przeciwciał pierwotnych zgodnie z protokołem tekstowym.
Następnie użyj szpatułki o zaokrąglonych krawędziach, aby przenieść kropelki na płytkę 96-dołkową o okrągłym dnie. Inkubować kropelki w 30 mikrolitrach mieszaniny przeciwciał pierwszorzędowych na kroplę przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Następnego dnia przenieś kropelki na 12-dołkową płytkę zawierającą 2 mililitry roztworu myjącego na studzienkę. Spłucz kropelki trzema 5-minutowymi płukaniami. Następnie umyj kropelki dziewięcioma 30-minutowymi płukaniami.
Następnego dnia spłucz kropelki trzy razy PBS. Przygotować odpowiednią mieszaninę przeciwciał drugorzędowych sprzężonych z fluoroforem zgodnie z protokołem tekstowym. Przenieść kropelki na 96-dołkową płytkę z okrągłym dnem, jak pokazano wcześniej. I inkubować płytkę z 30 mikrolitrami mieszaniny przeciwciał wtórnych przez cztery godziny w temperaturze pokojowej, chroniąc przed światłem.
Po 4 godzinach przenieś kropelki na 12-dołkową płytkę zawierającą 2 mililitry roztworu myjącego na studzienkę. Najpierw spłucz kropelki trzema 5-minutowymi płukaniami. Następnie umyj kropelki czterema 30-minutowymi płukaniami.
Następnego dnia spłucz kropelki pięć razy roztworem myjącym przez 30 minut i trzy razy PBS przez 30 minut. Następnego dnia przenieś kropelki na 96-dołkową płytkę z okrągłym dnem, jak pokazano wcześniej. Przeciwbarwić kropelki barwnikiem jądrowym Hoechst przez 30 minut w temperaturze pokojowej. Przenieść kropelki na 12-dołkową płytkę zawierającą 2 mililitry PBS na studzienkę. I spłucz trzy razy PBS.
Następnie nałóż wąską warstwę szybkoutwardzalnego medium montażowego wzdłuż krawędzi kwadratowej szyby nakrywkowej. I pozostaw do wyschnięcia na minutę. Następnie spłucz kropelkę, zanurzając ją w studzience 12-dołkowej płytki zawierającej wodę dejonizowaną. I przenieś kroplę na szkiełko mikroskopowe.
Następnie nasyp na kroplę 15 mikrolitrów nietwardniejącego środka montażowego zapobiegającego blaknięciu. Delikatnie umieść szkło nakrywkowe nad kroplą tak, aby medium montażowe było skierowane w stronę szkiełka. I niech się uspokoi.
Pozostaw szkiełka do wyschnięcia na dwie godziny w temperaturze pokojowej i przechowuj je przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Na koniec zobrazuj szkiełka za pomocą pionowego mikroskopu epifluorescencyjnego wyposażonego w funkcję sekcji optycznej przy obiektywie 20x lub 40x.