Barwienie immunohistochemiczne kriosekcji tkanek koronalnych szczurów dla mikrogleju i neuronów

0 wyświetleń3:59 min • April 28th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weź szkiełko zawierające utrwalone i przepuszczalne kriosekcje tkanki koronalnej szczura.

Obrysuj sekcje hydrofobowym pisakiem, aby stworzyć kontrolowane środowisko barwienia.

Przenieś skrawki do komory wilgotnościowej, aby zapobiec wysuszeniu odczynników i tkanek podczas kolejnych etapów.

Skrawki należy potraktować białkami surowicy, aby zablokować niespecyficzne miejsca wiązania.

Spłukać buforem, aby usunąć nadmiar białek surowicy.

Inkubować z pierwotnymi przeciwciałami skierowanymi przeciwko określonym białkom mikrogleju i neuronów.

Przemyć buforem w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał pierwszorzędowych.

Inkubować z przeciwciałami drugorzędowymi sprzężonymi z fluoroforem, które wiążą się z przeciwciałami pierwszorzędowymi.

Przemyć buforem w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał drugorzędowych. Następnie spłucz wodą podwójnie destylowaną.

Zastosuj wodne media montażowe, aby chronić sygnał fluorescencyjny, umieść szkiełko nakrywkowe i uszczelnij je.

Zobrazuj skrawki pod mikroskopem fluorescencyjnym, aby uwidocznić znakowany immunologicznie mikroglej i neurony.

Osusz krawędzie szkiełek i wykonaj odpychające płyny obramowanie wokół krawędzi szkiełka za pomocą pisaka, aby zapewnić równomierne pokrycie płynem i zmniejszyć efekty krawędzi. Następnie zablokuj sekcje, dodając 300 mikrolitrów surowicy w PBS do każdego szkiełka. Surowica powinna pochodzić od gatunku, w którym hodowane jest przeciwciało drugorzędowe. W tym przypadku użyto surowicy osła.

Upewnij się, że roztwór blokujący rozciąga się do krawędzi szkiełka i całkowicie zakrywa tkankę, aby uniknąć nierównomiernego barwienia. Umieść szkiełka w komorze wilgotnościowej do inkubacji w temperaturze pokojowej przez godzinę. Podczas inkubacji należy przygotować przeciwciała pierwszorzędowe. Rozcieńczyć przeciwciało IBA1 w ilości od 1 do 5 000 i przeciwciało neuronalne w ilości od 1 do 500 w mieszaninie 1% surowicy osła w PBS.

Usuń roztwór blokujący i dodaj 300 mikrolitrów roztworu przeciwciała, który zawiera oba interesujące nas przeciwciała. Umieść wszystkie szkiełka w komorze wilgotnościowej i inkubuj je przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Następnego ranka umyj szkiełka trzy razy w PBS przez pięć minut każda.

Przygotować mieszaninę fluorescencyjnych przeciwciał drugorzędowych, rozcieńczając je obie w ilości od 1 do 250, w 1% surowicy osła w PBS. Dodaj 300 mikrolitrów mieszanki na każde szkiełko. I umieść szkiełka w lekkiej, szczelnej komorze wilgotnościowej na 60 minut w temperaturze pokojowej. Następnie umyj szkiełka trzy razy w PBS przez pięć minut każde. I na koniec opłucz je w podwójnie destylowanej wodzie. Chroń szkiełka przed światłem podczas prania w PBS.

Dodaj kilka kropli wodnego podłoża montażowego, które pomaga zachować intensywność sygnału fluorescencji do każdego szkiełka. Następnie nakryj szkiełko podstawowe i usuń wszelkie pozostałe pęcherzyki powietrza za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką. Aby uszczelnić media montażowe na prowadnicach i zapobiec wysychaniu sekcji, pokryj krawędzie lakierem do paznokci. Szkiełka pozostawia się do wyschnięcia na płasko przez godzinę w lekko zabezpieczonym pudełku, a następnie przechowuje w lekkim, szczelnym pojemniku, zawijane w folię w temperaturze 4 stopni Celsjusza.

09:11

Analiza immunohistochemiczna w ośrodkowym układzie nerwowym szczura i skrawkach tkanek obwodowych węzłów chłonnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:37

Jednoczesna kriosekcja wielu mózgów gryzoni

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:04

Wykorzystanie fluorescencji w bliskiej podczerwieni i skanowania w wysokiej rozdzielczości do pomiaru ekspresji białek w mózgu gryzoni

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:36

Barwienie immunologiczne interneuronów w odcinku hipokampa szczura

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:46

Barwienie immunologiczne znakowanych fluorescencyjnie astrocytów w wycinku tkanki mózgowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:00

Kwantyfikacja nowo wygenerowanych neuronów w tkance mózgowej szczura przy użyciu techniki frakcjonowania optycznego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:30

Podstawa immunohistochemii na kriowyciętej tkance mózgowej szczura: przykładowe barwienie mikrogleju i neuronów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:46

Kriowycinki siatkówki, całe wierzchowania i hipotoniczne izolowane preparaty naczyniowe do immunohistochemicznej wizualizacji perycytów mikronaczyniowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:40

Barwienie immunofluorescencyjne przy użyciu IBA1 i TMEM119 do analizy gęstości mikrogleju, morfologii i infiltracji obwodowych komórek szpikowych w mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:58

Swobodne barwienie immunologiczne mózgów myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026