$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Weź szkiełko zawierające utrwalone i przepuszczalne kriosekcje tkanki koronalnej szczura.
Obrysuj sekcje hydrofobowym pisakiem, aby stworzyć kontrolowane środowisko barwienia.
Przenieś skrawki do komory wilgotnościowej, aby zapobiec wysuszeniu odczynników i tkanek podczas kolejnych etapów.
Skrawki należy potraktować białkami surowicy, aby zablokować niespecyficzne miejsca wiązania.
Spłukać buforem, aby usunąć nadmiar białek surowicy.
Inkubować z pierwotnymi przeciwciałami skierowanymi przeciwko określonym białkom mikrogleju i neuronów.
Przemyć buforem w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał pierwszorzędowych.
Inkubować z przeciwciałami drugorzędowymi sprzężonymi z fluoroforem, które wiążą się z przeciwciałami pierwszorzędowymi.
Przemyć buforem w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał drugorzędowych. Następnie spłucz wodą podwójnie destylowaną.
Zastosuj wodne media montażowe, aby chronić sygnał fluorescencyjny, umieść szkiełko nakrywkowe i uszczelnij je.
Zobrazuj skrawki pod mikroskopem fluorescencyjnym, aby uwidocznić znakowany immunologicznie mikroglej i neurony.
Osusz krawędzie szkiełek i wykonaj odpychające płyny obramowanie wokół krawędzi szkiełka za pomocą pisaka, aby zapewnić równomierne pokrycie płynem i zmniejszyć efekty krawędzi. Następnie zablokuj sekcje, dodając 300 mikrolitrów surowicy w PBS do każdego szkiełka. Surowica powinna pochodzić od gatunku, w którym hodowane jest przeciwciało drugorzędowe. W tym przypadku użyto surowicy osła.
Upewnij się, że roztwór blokujący rozciąga się do krawędzi szkiełka i całkowicie zakrywa tkankę, aby uniknąć nierównomiernego barwienia. Umieść szkiełka w komorze wilgotnościowej do inkubacji w temperaturze pokojowej przez godzinę. Podczas inkubacji należy przygotować przeciwciała pierwszorzędowe. Rozcieńczyć przeciwciało IBA1 w ilości od 1 do 5 000 i przeciwciało neuronalne w ilości od 1 do 500 w mieszaninie 1% surowicy osła w PBS.
Usuń roztwór blokujący i dodaj 300 mikrolitrów roztworu przeciwciała, który zawiera oba interesujące nas przeciwciała. Umieść wszystkie szkiełka w komorze wilgotnościowej i inkubuj je przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Następnego ranka umyj szkiełka trzy razy w PBS przez pięć minut każda.
Przygotować mieszaninę fluorescencyjnych przeciwciał drugorzędowych, rozcieńczając je obie w ilości od 1 do 250, w 1% surowicy osła w PBS. Dodaj 300 mikrolitrów mieszanki na każde szkiełko. I umieść szkiełka w lekkiej, szczelnej komorze wilgotnościowej na 60 minut w temperaturze pokojowej. Następnie umyj szkiełka trzy razy w PBS przez pięć minut każde. I na koniec opłucz je w podwójnie destylowanej wodzie. Chroń szkiełka przed światłem podczas prania w PBS.
Dodaj kilka kropli wodnego podłoża montażowego, które pomaga zachować intensywność sygnału fluorescencji do każdego szkiełka. Następnie nakryj szkiełko podstawowe i usuń wszelkie pozostałe pęcherzyki powietrza za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką. Aby uszczelnić media montażowe na prowadnicach i zapobiec wysychaniu sekcji, pokryj krawędzie lakierem do paznokci. Szkiełka pozostawia się do wyschnięcia na płasko przez godzinę w lekko zabezpieczonym pudełku, a następnie przechowuje w lekkim, szczelnym pojemniku, zawijane w folię w temperaturze 4 stopni Celsjusza.