Obrazowanie wewnątrzkomórkowej dynamiki ATP za pomocą czujników opartych na FRET w organotypowym wycinku hipokampa myszy

0 wyświetleń3:40 min • April 28th, 2025

Zabezpiecz organtypowy plaster hipokampa myszy w komorze doświadczalnej.

Wycinek zawiera transdukowane neurony i astrocyty wyrażające czujnik ATP z białkami fluorescencyjnymi dawcy i akceptora.

Umieść komorę na stoliku mikroskopu fluorescencyjnego i przeprowadź ją za pomocą natlenionego ACSF.

Pozwól plasterkowi dostosować się do warunków buforowania.

Używając światła transmisyjnego, skup plasterek i zidentyfikuj obszar zainteresowania.

Przełącz na tryb fluorescencji i wzbudz białko fluorescencyjne dawcy, aby zainicjować emisję fluorescencji.

Po związaniu ATP, czujnik ulega zmianom konformacyjnym, umożliwiając oparty na fluorescencji transfer energii od dawcy do akceptora, który emituje fluorescencję na dłuższym fali.

Użyj dichroicznego lustra i filtrów pasmowoprzepustowych, aby wyizolować i oddzielić emisje donorów i akceptorów.

Wybierz region bez fluorescencji do odejmowania tła. Następnie zidentyfikuj komórki docelowe i zarejestruj ich fluorescencję w czasie.

Oblicz współczynnik FRET, aby monitorować wewnątrzkomórkowe poziomy ATP w czasie rzeczywistym.

Przygotować eksperymentalny ACSF i uzyskać pH 7,4 poprzez bulgotanie go 95% tlenem i 5% dwutlenkiem węgla przez włożony rurkę podłączoną do źródła karbogenu przez co najmniej 30 minut. Utrzymuj sól fizjologiczną w stanie bąbelkowym przez cały eksperyment. Następnie włącz fluorescencyjne źródło światła monochromatora.

Przenieść organotypową kulturę plastrów do komory doświadczalnej. Umieść siatkę na wierzchu organotypowej kultury plastrów ramką do dołu, nie dotykając kultury, a nitkami do góry, dotykając membrany. Umieść komorę na stoliku mikroskopu i podłącz ją do systemu perfuzyjnego.

Włącz pompę perystaltyczną przy natężeniu przepływu od 1,5 do 2,5 mililitra na minutę. Upewnij się, że system perfuzyjny nie jest nieszczelny. Używając światła transmisyjnego, ustaw ostrość wyhodowany wycinek i zidentyfikuj obszar, w którym należy przeprowadzić eksperymenty.

Przed rozpoczęciem eksperymentów obrazowych odczekaj co najmniej 15 minut, aby plastry przystosowały się do warunków soli fizjologicznej. Następnie włącz aparat i oprogramowanie do obrazowania. Wzbudz białko fluorescencyjne donora przy 435 nanometrach. Ustaw czas ekspozycji w zakresie od 40 do 90 milisekund.

Następnie włóż zwierciadło dichroiczne i filtry do rozdzielacza wiązki. Podziel emisję fluorescencji na 500 nanometrów za pomocą rozdzielacza obrazu emisyjnego i zastosuj filtry pasmowoprzepustowe przy 482 plus minus 16 i 542 plus minus 13,5 nanometra, aby dalej izolować fluorescencję donorową i akceptorową.

Wybierz obszar zainteresowania pozornie pozbawiony fluorescencji komórkowej do odejmowania tła. Zakreśl pojedyncze struktury oznakowanej tkanki na obrazie na ekranie, aby utworzyć ROI. Ustaw częstotliwość akwizycji obrazu w całkowitym czasie nagrywania. W przypadku eksperymentów trwających dłużej niż 30 minut zaleca się częstotliwość akwizycji od 0,2 do 0,5 Hz, aby zapobiec fototoksyczności. Następnie rozpocznij nagrywanie.

08:38

Wizualizacja i obrazowanie na żywo organelli oligodendrocytów w organotypowych wycinkach mózgu przy użyciu wirusa związanego z adenowirusem i mikroskopii konfokalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:27

Dwufotonowe obrazowanie przyciągania procesów mikroglejowych do ATP lub serotoniny w ostrych wycinkach mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:31

Mikroskopia fluorescencyjna w celu internalizacji ATP za pośrednictwem makropinocytozy w ludzkich komórkach nowotworowych i myszach z ksenoprzeszczepem guza

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:41

Organotypowy test skrawkowy do wysokorozdzielczego obrazowania poklatkowego migracji neuronalnej w mózgu postnatalnym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:50

Mapowanie hamujących obwodów neuronalnych za pomocą fotostymulacji skanującej laserowo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:33

Funkcjonalne obrazowanie wapnia w rozwijających się sieciach korowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:14

Obrazowanie odpowiedzi wapniowych w neuronach z etykietą GFP w skrawkach mózgu myszy z obszaru podwzgórza

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:19

Obrazowanie wewnątrzkomórkowych sygnałów Ca2+ w astrocytach prążkowia od dorosłych myszy przy użyciu genetycznie kodowanych wskaźników wapnia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:29

Wielofotonowe wewnątrzkomórkowe obrazowanie sodu w połączeniu z ogniskowym rozpakowywaniem glutaminianu za pośrednictwem promieniowania UV w neuronach piramidowych CA1

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:35

Dwufotonowe obrazowanie wapnia w dendrytach neuronalnych w wycinkach mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026