JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuronauka
0 wyświetleń • 3:40 min • April 28th, 2025
Zabezpiecz organtypowy plaster hipokampa myszy w komorze doświadczalnej.
Wycinek zawiera transdukowane neurony i astrocyty wyrażające czujnik ATP z białkami fluorescencyjnymi dawcy i akceptora.
Umieść komorę na stoliku mikroskopu fluorescencyjnego i przeprowadź ją za pomocą natlenionego ACSF.
Pozwól plasterkowi dostosować się do warunków buforowania.
Używając światła transmisyjnego, skup plasterek i zidentyfikuj obszar zainteresowania.
Przełącz na tryb fluorescencji i wzbudz białko fluorescencyjne dawcy, aby zainicjować emisję fluorescencji.
Po związaniu ATP, czujnik ulega zmianom konformacyjnym, umożliwiając oparty na fluorescencji transfer energii od dawcy do akceptora, który emituje fluorescencję na dłuższym fali.
Użyj dichroicznego lustra i filtrów pasmowoprzepustowych, aby wyizolować i oddzielić emisje donorów i akceptorów.
Wybierz region bez fluorescencji do odejmowania tła. Następnie zidentyfikuj komórki docelowe i zarejestruj ich fluorescencję w czasie.
Oblicz współczynnik FRET, aby monitorować wewnątrzkomórkowe poziomy ATP w czasie rzeczywistym.
Przygotować eksperymentalny ACSF i uzyskać pH 7,4 poprzez bulgotanie go 95% tlenem i 5% dwutlenkiem węgla przez włożony rurkę podłączoną do źródła karbogenu przez co najmniej 30 minut. Utrzymuj sól fizjologiczną w stanie bąbelkowym przez cały eksperyment. Następnie włącz fluorescencyjne źródło światła monochromatora.
Przenieść organotypową kulturę plastrów do komory doświadczalnej. Umieść siatkę na wierzchu organotypowej kultury plastrów ramką do dołu, nie dotykając kultury, a nitkami do góry, dotykając membrany. Umieść komorę na stoliku mikroskopu i podłącz ją do systemu perfuzyjnego.
Włącz pompę perystaltyczną przy natężeniu przepływu od 1,5 do 2,5 mililitra na minutę. Upewnij się, że system perfuzyjny nie jest nieszczelny. Używając światła transmisyjnego, ustaw ostrość wyhodowany wycinek i zidentyfikuj obszar, w którym należy przeprowadzić eksperymenty.
Przed rozpoczęciem eksperymentów obrazowych odczekaj co najmniej 15 minut, aby plastry przystosowały się do warunków soli fizjologicznej. Następnie włącz aparat i oprogramowanie do obrazowania. Wzbudz białko fluorescencyjne donora przy 435 nanometrach. Ustaw czas ekspozycji w zakresie od 40 do 90 milisekund.
Następnie włóż zwierciadło dichroiczne i filtry do rozdzielacza wiązki. Podziel emisję fluorescencji na 500 nanometrów za pomocą rozdzielacza obrazu emisyjnego i zastosuj filtry pasmowoprzepustowe przy 482 plus minus 16 i 542 plus minus 13,5 nanometra, aby dalej izolować fluorescencję donorową i akceptorową.
Wybierz obszar zainteresowania pozornie pozbawiony fluorescencji komórkowej do odejmowania tła. Zakreśl pojedyncze struktury oznakowanej tkanki na obrazie na ekranie, aby utworzyć ROI. Ustaw częstotliwość akwizycji obrazu w całkowitym czasie nagrywania. W przypadku eksperymentów trwających dłużej niż 30 minut zaleca się częstotliwość akwizycji od 0,2 do 0,5 Hz, aby zapobiec fototoksyczności. Następnie rozpocznij nagrywanie.
Niniejszy artykuł opisuje metodę monitorowania w czasie rzeczywistym wewnątrzkomórkowych poziomów ATP z wykorzystaniem transferu energii między fluorescencyjnymi donorami a akceptorami (FRET) w organotypowych skrawkach hipokampa myszy. Podejście to opiera się na zastosowaniu transdukowanych neuronów i astrocytów wykazujących ekspresję sensora ATP z fluorescencyjnymi białkami donora i akceptora.
Monitorowanie dynamiki wewnątrzkomórkowego ATP w żywej tkance mózgowej umożliwia mechanistyczną redukcję ryzyka w przypadku celów neuroterapeutycznych poprzez powiązanie stanów energetycznych komórek z wynikami funkcjonalnymi. To podejście oparte na metodzie FRET wspiera walidację celów we wczesnej fazie odkrywania, dostarczając ilościowych odczytów metabolizmu neuronów i gleju w czasie rzeczywistym w warunkach fizjologicznych. Metoda ta zwiększa pewność prognostyczną w modelach przedklinicznych poprzez zachowanie architektury tkanki, umożliwiając jednocześnie podłużną ocenę wahań poziomu ATP w odpowiedzi na perturbacje farmakologiczne lub genetyczne.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum odkrywania leków, od wczesnej walidacji celu po profilowanie przedkliniczne, w którym monitorowanie ATP w czasie rzeczywistym dostarcza informacji zarówno na temat mechanizmu działania, jak i oceny toksyczności komórkowej.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026