-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
Dwukolorowe, stymulowane obrazowanie rozpraszania Ramana tkanki mózgowej myszy
Dwukolorowe, stymulowane obrazowanie rozpraszania Ramana tkanki mózgowej myszy
Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Neuroscience
Two-Color Stimulated Raman Scattering Imaging of Mouse Brain Tissue

Dwukolorowe, stymulowane obrazowanie rozpraszania Ramana tkanki mózgowej myszy

Protocol
423 Views
07:16 min
July 8, 2025
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Weź wycinek mózgu myszy w komorze na szkiełku i umieść go pod mikroskopem ze stymulowanym systemem obrazowania rozpraszania Ramana lub SRS.

Skoncentruj dwie zsynchronizowane wiązki laserowe, znane jako pompa i wiązki Stokesa, na tkance.

Różnica energii między tymi wiązkami odpowiada częstotliwości drgań określonych cząsteczek, indukowanie drgań molekularnych.

Pobudzaj lipidy i białka tkankowe, mające unikalne wibracje molekularne, używając odrębnych par częstotliwości zsynchronizowanych wiązek.

Wzbudzenie ułatwia przenoszenie energii między wiązkami, zmniejszając intensywność wiązki pompy, jednocześnie zwiększając intensywność wiązki Stokesa.

Względna zmiana intensywności jest wykrywana jako sygnał SRS, który pomaga zidentyfikować cząsteczki.

Fotodetektor zbiera połączone sygnały SRS z próbki.

Przypisz sygnałom lipidowym i białkowym oddzielne kolory, tworząc dwukolorowy obraz, aby zidentyfikować białka i lipidy w tkance mózgowej.

Umieść próbnik wiązki w ścieżce wiązki stokes, aby pobrać 10% wiązki. I wyślij go do szybkiej fotodiody, aby wykryć 8-megahercowy ciąg impulsów. Weź jedno z wyjść bufora fanout i przefiltruj je filtrem pasmowoprzepustowym, aby uzyskać falę sinusoidalną o częstotliwości 20 megaherców. Następnie użyj tłumika RF, aby dostosować napięcie szczytowe wejścia/wyjścia do napięcia szczytowego do około 500 miliwoltów. Wyślij wynikowe wyjście do przesuwnika fazowego, który umożliwia precyzyjną regulację fazy RF za pomocą źródła napięcia.

Wyślij to wyjście do wzmacniacza mocy RF i podłącz wyjście amplifier do EOM. Po odblokowaniu wiązki stokesów zoptymalizuj głębokość modulacji pierwszego EOM, umieszczając fotodiodę na ścieżce wiązki. Dostosuj napięcie EOM i płytkę ćwierćfalową, aż głębokość modulacji będzie wydawać się zadowalająca. Umieść fotodiodę za lustrem dichroicznym, aby wykryć wiązkę laserową. Najpierw zablokuj wiązkę stokes. Następnie powiększ jeden z pików impulsów pompy na oscyloskopie. Umieść pionowy kursor, aby zaznaczyć czasowe położenie tego piku za pomocą oscyloskopu.

Teraz zablokuj belkę pompy i odblokuj belkę stokes. Przetłumacz stopień opóźnienia, aby tymczasowo dopasować pozycje szczytowe na oscyloskopie do pozycji zaznaczonej w poprzednim kroku, obliczając odległość opóźnienia wymaganą do dopasowania dwóch wiązek, a następnie wydłużając tor wiązki szybszej wiązki lub skracając tor wiązki wolniejszej wiązki.

Następnie przygotuj próbkę szkiełka mikroskopowego z DMSO i taśmą dwustronną jako przekładką, aby utrzymać próbkę między szkiełkiem podstawowym a szkiełkiem nakrywkowym. Umieść próbkę na mikroskopie stroną z szkiełkiem nakrywkowym skierowaną w stronę obiektywu mikroskopu i obserwuj próbkę z okularu w jasnym oświetleniu. Znajdź ognisko próbki zarówno w górnej, jak i dolnej warstwie pęcherzyków powietrza na granicy faz taśmy szklanej. Następnie przesuń ostrość tak, aby znajdowała się między dwiema warstwami taśmy.

Następnie ustaw wejście/wyjście przestrajalnej wiązki na 798 nanometrów. Opierając się na przepustowości optycznej kondensatora, dostosuj moc optyczną tak, aby wynosiła około 40 miliwatów każda dla pompy i kieruje wiązki na ognisko obiektywu. Następnie otwórz zeskanowany obraz w Matlabie i kliknij przycisk oznaczony Focus, aby rozpocząć skanowanie. Wyreguluj lusterko kierownicze przed skanerem galvo, aby wyśrodkować sygnał DC na wyświetlaczu kanału 1.

Przesuń zmotoryzowany stopień opóźniający i uważnie obserwuj blokadę wyjścia pokazaną na wyświetlaczu kanału drugiego. Na koniec dostosuj opóźnienie czasowe, aby zmaksymalizować intensywność sygnału AC. Wyreguluj zwierciadło dichroiczne, aby wyśrodkować sygnał SRS na kanale AC. Następnie wyreguluj fazę blokady we wzmacniaczu, aby zmaksymalizować sygnał.

Po zamontowaniu próbki wsuń na mikroskop i dostosuj moc obu wiązek do około 40 miliwatów każda przy ogniskowaniu próbki, jak pokazano wcześniej, otwarty obraz skanowania z Matlaba. Następnie znajdź maksymalny sygnał SRS, skanując przez stopień opóźniający odpowiadający 2913 odwrotnemu centymetrowemu pikowi Ramana DMSO.

Uzyskaj obraz SRS odpowiadający pikowi Ramana o długości 2913 odwróconych centymetrów DMSO. Otwórz obraz w ImageJ i wybierz mały obszar na środku ramki. Funkcja miary służy do obliczania średniej i odchylenia standardowego wartości w wybranym obszarze. Aby uzyskać kalibrację osi częstotliwości, zapisz skan hiperspektralny z zakresem stopnia opóźnienia obejmującym 2,913 i 2,994 odwrotne centymetry szczytów Ramana DMSO.

Następnie zapisz pozycje stołu montażowego odpowiadające zestawowi danych hiperspektralnych. Wykonaj regresję liniową dla pozycji sceny i przesunięć Ramana o 2,913 i 2,994 centymetry odwrotne. Korzystając z równania regresji liniowej, przekształć pozycje opóźnienia na odpowiadające im częstotliwości Ramana. W celu kalibracji rozdzielczości spektralnej należy oszacować pozycję stolika na podstawie poprzedniej pozycji ze zwiększoną długością ścieżki optycznej spowodowaną wstawieniem prętów. Wyrównaj przestrzenne nakładanie się belki ze względu na niewielkie odchylenie belki podczas dodawania prętów szklanych.

Zainstaluj rozdzielacz wiązki polaryzacyjnej, płytkę ćwierćfalową i drugi EOM w ścieżce wiązki stokes po pierwszym EOM. Odłącz wejście sygnału od drugiego EOM. Następnie podłącz wejście sygnału do pierwszego EOM i włącz go. Moduluj wiązkę stokesów w megahercach, wysyłając wiązkę przez pierwszy EOM. Dostosuj nachylenie i położenie pierwszego EOM, aby upewnić się, że wiązka jest wyśrodkowana przez kryształ EOM. Przygotuj próbkę wycinka tkanki za pomocą taśmy dwustronnej, szkiełka mikroskopowego i szkła nakrywkowego.

Umieść próbkę na mikroskopie stroną z szkiełkiem nakrywkowym skierowaną w stronę obiektywu mikroskopu. W przypadku obrazowania SRS w trybie Epi zainstaluj płytkę półfalową, zanim wiązka wejdzie do mikroskopu, aby zmienić polaryzację wiązki trafiającej do mikroskopu. Umieść rozdzielacz wiązki polaryzacyjnej nad obiektywem, aby zdepolaryzowana wiązka odbita wstecznie mogła dotrzeć do detektora.

Następnie użyj soczewki achromatycznej 75 i milimetrowej soczewki asferycznej, aby przekazać rozproszone wstecznie fotony z tylnej apertury obiektywu do fotodetektora. Zamontuj detektor, aby zebrać światło rozproszone wstecznie kierowane przez rozdzielacz wiązki polaryzacyjnej. Następnie zainstaluj filtr, aby zablokować modulowaną wiązkę przed wejściem do detektora.

Related Videos

In vivo (in vivo) Obrazowanie tkanek biologicznych za pomocą połączonej mikroskopii fluorescencji dwufotonowej i wymuszonego rozpraszania Ramana

09:06

In vivo (in vivo) Obrazowanie tkanek biologicznych za pomocą połączonej mikroskopii fluorescencji dwufotonowej i wymuszonego rozpraszania Ramana

Related Videos

3.7K Views

Bezpośrednie porównanie hiperspektralnie stymulowanego rozpraszania Ramana i koherentnej mikroskopii rozpraszania Ramana antystokesa do obrazowania chemicznego

09:46

Bezpośrednie porównanie hiperspektralnie stymulowanego rozpraszania Ramana i koherentnej mikroskopii rozpraszania Ramana antystokesa do obrazowania chemicznego

Related Videos

4.7K Views

Multipleksowe obrazowanie chemiczne oparte na szerokopasmowej mikroskopii rozpraszania Ramana stymulowanego

09:57

Multipleksowe obrazowanie chemiczne oparte na szerokopasmowej mikroskopii rozpraszania Ramana stymulowanego

Related Videos

4.5K Views

Mikroskopia wielofotonowa oczyszczonego mózgu myszy wyrażającego YFP

10:03

Mikroskopia wielofotonowa oczyszczonego mózgu myszy wyrażającego YFP

Related Videos

14.3K Views

Jednoczesne obrazowanie dynamiki mikrogleju i aktywności neuronalnej u wybudzonej myszy

03:13

Jednoczesne obrazowanie dynamiki mikrogleju i aktywności neuronalnej u wybudzonej myszy

Related Videos

601 Views

Koherentna spektroskopia Ramana antystokesa do wizualizacji mielinizowanych neuronów w tkance mózgowej myszy

03:00

Koherentna spektroskopia Ramana antystokesa do wizualizacji mielinizowanych neuronów w tkance mózgowej myszy

Related Videos

336 Views

Tomografia optyczna całych mózgów myszy z rozdzielczością mikronową z konfokalną mikroskopią arkuszową światła

09:49

Tomografia optyczna całych mózgów myszy z rozdzielczością mikronową z konfokalną mikroskopią arkuszową światła

Related Videos

17.1K Views

Ostry uraz mózgu u myszy, po którym następuje podłużne obrazowanie dwufotonowe

11:14

Ostry uraz mózgu u myszy, po którym następuje podłużne obrazowanie dwufotonowe

Related Videos

12.9K Views

Jednoczesne dwufotonowe obrazowanie in vivo wejść synaptycznych i celów postsynaptycznych w korze zaśledzinowej myszy

16:45

Jednoczesne dwufotonowe obrazowanie in vivo wejść synaptycznych i celów postsynaptycznych w korze zaśledzinowej myszy

Related Videos

12K Views

Wielkoskalowe trójwymiarowe obrazowanie organizacji komórkowej w korze nowej myszy

09:55

Wielkoskalowe trójwymiarowe obrazowanie organizacji komórkowej w korze nowej myszy

Related Videos

8.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code