Podłużne obrazowanie dwufotonowe znakowanych fluorescencyjnie neuronów w żywym hipokampie myszy

0 wyświetleń2:36 min • May 29th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy znieczuloną transgeniczną mysz wykazującą ekspresję białek fluorescencyjnych w rzadkich neuronach piramidowych.

Mysz jest wszczepiana z kaniulą obrazującą nad grzbietowym hipokampem.

Umieść mysz pod mikroskopem dwufotonowym na poduszce grzewczej, mocując płytkę główki kaniuli do uchwytu, aby unieruchomić jej głowę.

Zastosuj maść, aby zapobiec wysuszeniu rogówki.

Oczyść kaniulę wodą dejonizowaną i sprawdź ją pod obiektywem o małym powiększeniu, aby sprawdzić, czy nie ma zanieczyszczeń, uszkodzeń lub problemów z fluorescencją.

Dopasuj kaniulę obrazowania do osi optycznej mikroskopu, aby uzyskać precyzyjne obrazowanie.

Następnie przełącz się na obiektyw o wysokiej rozdzielczości zanurzony w wodzie.

Napełnij kaniulę wodą dejonizowaną, upewniając się, że nie ma pęcherzyków powietrza, aby uniknąć zniekształceń obrazu.

Wykonaj dwufotonowe obrazowanie podłużne za pomocą światła podczerwonego, aby selektywnie wzbudzić fluorofory w płaszczyźnie ogniskowej, umożliwiając obrazowanie głębokich tkanek.

Wszczepiona kaniula ułatwia wielokrotny dostęp do grzbietowego hipokampa w celu śledzenia zmian dendrytycznych w czasie.

Umieść mysz pod mikroskopem nad dywanem grzewczym i przymocuj płytę głowicy do uchwytu. Nałóż maść do oczu na oczy zwierzęcia. Następnie wyczyść kaniulę obrazowania za pomocą strzykawki i cienkiej igły, aby wkroplić dejonizowaną wodę do kaniuli, a następnie usuń ją za pomocą pompy próżniowej.

Używaj obiektywów o małym powiększeniu i dużej odległości roboczej, aby wizualnie sprawdzić kaniulę pod kątem resztek wody, brudu, integralności i obecności fluorescencji. Następnie dopasuj kaniulę do osi optycznej, regulując kąty ramion uchwytu głowy.

Przełącz się na obiektyw 25x z aperturą numeryczną 1,0 i 4-milimetrową odległością roboczą. Następnie dodaj tyle wody dejonizowanej do kaniuli, aby ją napełnić i utrzymać nadmiar wody na wierzchu kaniuli. Na koniec użyj wzbudzenia dwoma fotonami i zobrazuj sygnały fluorescencyjne.

10:35

Dwufotonowe obrazowanie wapnia w dendrytach neuronalnych w wycinkach mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:03

In vivo (in vivo) Przewlekłe dwufotonowe obrazowanie mikrogleju w hipokampie myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:45

In vivo (in vivo) Szerokokątne i dwufotonowe obrazowanie wapnia za pomocą myszy przy użyciu dużego okna czaszki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:19

Mikroskopia dwufotonowa astrocytów i neuronów pobudzających w oczyszczonej tkance hipokampa myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:52

Mikroskopia dwufotonowa do obrazowania morfologii neuronów u szczeniaka myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:25

Dwufotonowa mikroskopia holograficzna do badania aktywności neuronalnej i łączności w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:42

Dwufotonowe obrazowanie in vivo dynamiki mikrogleju w hipokampie myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:07

In vivo (in vivo) Dwufotonowe obrazowanie zależnych od doświadczenia zmian molekularnych w neuronach korowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:53

Dwufotonowe obrazowanie in vivo kolców dendrytycznych w korze myszy przy użyciu preparatu z rozrzedzoną czaszką

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

16:45

Jednoczesne dwufotonowe obrazowanie in vivo wejść synaptycznych i celów postsynaptycznych w korze zaśledzinowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026