Wizualizacja morfologii astrocytów za pomocą jonoforezy barwnika fluorescencyjnego w nieruchomym wycinku mózgu myszy

0 wyświetleń4:19 min • May 29th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Umieść chemicznie utrwalony plasterek mózgu myszy w naczyniu ze szklanym dnem zawierającym bufor i zabezpiecz go siatką.

Podłącz elektrodę wypełnioną anionowym, hydrofilowym barwnikiem fluorescencyjnym do źródła napięcia.

Włóż elektrodę uziemiającą do bufora, aby zakończyć obwód elektryczny.

Korzystając z oświetlenia jasnego pola, przesuń elektrodę wypełnioną barwnikiem w kierunku plasterka.

Przełącz się na obrazowanie różnicowe z interferencją kontrastową w podczerwieni, aby zlokalizować astrocyt.

Przebij somę astrocytów elektrodą, aby uzyskać dostęp do cytoplazmy.

Zastosuj prąd elektryczny, aby wprowadzić barwnik do cytoplazmy za pomocą jonoforezy.

Przełącz się na mikroskopię konfokalną, aby monitorować ruch barwnika.

Barwnik hydrofilowy, niezdolny do przejścia przez błonę hydrofobową, dyfunduje w cytoplazmie, wypełniając somę i gałęzie.

Po napełnieniu ogniwa zatrzymaj prąd i wycofaj elektrodę.

Poczekaj, aż błona astrocytów ponownie się uszczelni.

Pobieraj obrazy w różnych płaszczyznach Z i rekonstruuj je, aby zobrazować morfologię astrocytów.

W teście wstrzykiwania barwnika delikatnie umieść lekko utrwalony plasterek mózgu w naczyniu ze szklanym dnem wypełnionym 0,1 molowym PBS w temperaturze pokojowej. I przytrzymaj plasterek na miejscu za pomocą platynowej harfy z nylonowymi strunami.

Podłącz elektrodę do źródła napięcia i umieść elektrodę masową w kąpieli zawierającej wycinek mózgu. Przenieś obiektyw mikroskopu konfokalnego na obszar mózgu będący przedmiotem zainteresowania.

I opuść elektrodę do roztworu za pomocą soczewki zanurzonej w wodzie 10x, przesuwając elektrodę do środka pola widzenia. Następnie, w jasnym polu, powoli opuść elektrodę w kierunku warstwy, zatrzymując się tuż nad powierzchnią.

Aby wypełnić interesujący astrocyt jonoforezą, użyj kontrastu różnicowego interferencji w podczerwieni, aby zidentyfikować astrocyty z wydłużonymi, owalnymi somatami o średnicy około 10 mikrometrów, 40 do 50 mikrometrów poniżej powierzchni plasterka.

Jest to warstwa promienista hipokampa znajdująca się bezpośrednio pod piramidalną warstwą komórkową. Gdy poruszamy się po tkance, możemy zobaczyć naczynia krwionośne, neurony, astrocyty i inne typy komórek.

Po wybraniu astrocytu przesuń komórkę na środek pola widzenia i powoli opuść końcówkę elektrody do wycinka. Poruszanie się po tkance, aż elektroda znajdzie się na tej samej płaszczyźnie co ciało komórki.

Gdy ciało komórki astrocytu jest wyraźnie widoczne i zarysowane, powoli i delikatnie przesuwaj elektrodę do przodu, przesuwając elektrodę, aż końcówka przebije somę komórki.

Powoli przesuwaj ostrość obiektywu w górę iw dół, aby zauważyć, czy elektroda znajduje się wewnątrz somy. Gdy końcówka elektrody znajdzie się wewnątrz ogniwa, włącz stymulator na 0,5 do 1 wolta, aby w sposób ciągły wyrzucać prąd do ogniwa.

Korzystając z mikroskopu konfokalnego, obserwuj, jak komórka się wypełnia, zwiększając zoom cyfrowy, aby uwidocznić szczegóły komórki i upewnić się, że końcówka elektrody jest widoczna wewnątrz ogniwa, jeśli to konieczne.

Odczekaj około 15 minut, aż drobniejsze gałęzie i procesy pojawią się zdefiniowane, zanim wyłączysz napięcie i delikatnie wyjmiesz końcówkę elektrody z ogniwa.

Aby zobrazować wypełnioną komórkę, odczekaj od 15 do 20 minut, aż komórka powróci do swojej pierwotnej formy, zanim dostosujesz ustawienie w mikroskopie konfokalnym, aby upewnić się, że drobniejsze gałęzie i procesy wydają się być zdefiniowane pod obiektywem 40x.

Ustaw stos z krokiem o rozmiarze 0,3 mikrometra, przesuwając obiektyw podczas obrazowania, aż nie będzie sygnału z komórki. I ustaw ten krok jako szczyt.

Następnie przesuń obiektyw w dół, ustawiając ostrość przez komórkę, aż nie będzie sygnału. I ustaw ten krok jako dół.

11:19

Zewnątrzkomórkowy zapis aktywności neuronalnej w połączeniu z mikrojonoforowym zastosowaniem substancji neuroaktywnych u obudzonych myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:45

Jonoforeza w czasie rzeczywistym z tetrametyloamonem w celu ilościowego określenia frakcji objętościowej i krętości przestrzeni zewnątrzkomórkowej mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:53

Analiza objętości terytorium astrocytów i kafelkowania w grubych, swobodnie pływających skrawkach tkanek

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:41

Organotypowy test skrawków do wysokorozdzielczego obrazowania time-lapse migracji neuronalnej w mózgu postnatalnym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:46

Barwienie immunologiczne znakowanych fluorescencyjnie astrocytów w wycinku tkanki mózgowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:47

Indukowanie plastyczności receptorów astrocytarnych poprzez manipulację szybkością odpalania neuronów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:10

Analiza rozmiaru, kształtu i kierunkowości sieci sprzężonych astrocytów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:38

Wizualizacja morfologii astrocytów za pomocą jonoforezy Lucyfera Yellow

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:19

Wizualizacja i analiza transportu wewnątrzkomórkowego organelli i innych ładunków w astrocytach

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

11:20

Obrazowanie wewnątrzkomórkowego ATP w organotypowych wycinkach tkanki mózgu myszy przy użyciu czujnika ATeam1.03YEMK opartego na FRET

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026