Obrazowanie poklatkowe migracji radialnej neuronów korowych w transdukowanych wycinkach mózgu embrionalnego myszy

0 wyświetleń2:59 min • May 29th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy wkładkę błonową zawierającą transdukowane embrionalne organotypowe wycinki mózgu myszy, w których neurony i promieniste komórki glejowe wyrażają białka fluorescencyjne, umożliwiając ich wizualizację.

Za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej wybierz wycinek z fluorescencyjnymi neuronami korowymi migrującymi promieniście w kierunku powierzchni wycinka za pomocą nienaruszonych promienistych rusztowań glejowych.

Przenieś wkładkę membranową z wybranym plasterkiem do naczynia ze szklanym dnem z pożywką, aby wspomóc aktywność komórkową podczas obrazowania.

Umieść naczynie w klimatyzowanej komorze odwróconego mikroskopu konfokalnego, aby zapewnić żywotność komórek.

Dostosuj parametry obrazowania, aby uchwycić wyraźne obrazy, jednocześnie minimalizując uszkodzenia foto.

Następnie skonfiguruj stos Z w regionie docelowym, aby zwizualizować struktury komórkowe.

Inicjuj obrazowanie poklatkowe w regularnych odstępach czasu.

Przeanalizuj obrazy, aby ocenić radialną migrację neuronów korowych ze strefy podkomorowej w kierunku płytki korowej wzdłuż promieniowych rusztowań glejowych, podkreślając wzorce migracji neuronów.

Wybierz wycinek mózgu do obrazowania, oglądając wycinki przez odwrócony mikroskop. Wybierz wycinek z jasnymi pojedynczymi neuronami w górnej części SVZ, migrującymi promieniście w kierunku powierzchni wycinka.

Obecność drobnych procesów fluorescencyjnych promieniowych komórek glejowych, które obejmują całą płytkę korową, wskazuje na nienaruszone promieniste rusztowanie glejowe, które jest wykorzystywane przez migrujące neurony korowe.

Przenieś wkładkę membranową z wybranym plastrem do naczynia ze szklanym dnem o średnicy 50 milimetrów zawierającego 2 mililitry pożywki do hodowli plastrów. Umieść naczynie w komorze klimatycznej mikroskopu konfokalnego.

Ustaw rozdzielczość na 512 na 512 pikseli. Zwiększ prędkość skanowania z 400 Hz do 700 Hz, aby zwiększyć liczbę klatek na sekundę z około 1,4 do około 2,5 klatek na sekundę. Uśredniaj nie więcej niż dwa razy.

Zdefiniuj stos Z przechodzący przez obszar elektroporowany z krokiem o wielkości 1,5 mikrona. Rozpocznij serię poklatkową, wykonując stos Z co 30 minut. Opisane ustawienia pozwalają na uzyskanie wystarczającej rozdzielczości i jasności obrazu przy jednoczesnym utrzymaniu niskich uszkodzeń fotologicznych podczas akwizycji.

09:10

Ex vivo Obrazowanie pourodzeniowej migracji komórek ziarnistych móżdżku za pomocą makroskopii konfokalnej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:13

Wielofotonowe obrazowanie poklatkowe w celu wizualizacji rozwoju w czasie rzeczywistym: wizualizacja migrujących komórek grzebienia nerwowego w zarodkach danio pręgowanego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:50

Ex Utero Elektroporacja i organotypowe kultury warstwowe embrionalnych mózgów myszy do obrazowania na żywo migrujących interneuronów GABA-ergicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:41

Organotypowy test skrawków do wysokorozdzielczego obrazowania time-lapse migracji neuronalnej w mózgu postnatalnym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:25

Obrazowanie time-lapse migracji neuroblastów w ostrych skrawkach przedmózgowia dorosłej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:51

In vivo (in vivo) Poporodowa elektroporacja i obrazowanie poklatkowe migracji neuroblastów w ostrych wycinkach mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:33

Poklatkowe obrazowanie konfokalne migrujących neuronów w organotypowej kulturze warstwowej embrionalnego mózgu myszy przy użyciu elektroporacji in utero

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:45

In Situ Wizualizacja wzrostu aksonów i dynamiki stożków wzrostu w ostrych kulturach embrionalnych wycinków mózgu ex vivo

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:17

Obrazowanie poklatkowe migrujących neuronów i progenitorów glejowych w embrionalnych wycinkach mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026