Wizualizacja i mapowanie blaszek amyloidowych znakowanych metoksy-X04 w sekcji mózgu myszy z chorobą Alzheimera

0 wyświetleń3:19 min • May 29th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od sekcji tkanki mózgowej myszy zawierającej obszar zainteresowania w buforze w celu utrzymania nawodnienia podczas obrazowania.

Tkanka jest pozyskiwana z mysiego modelu choroby Alzheimera, któremu wstrzyknięto metoksy X04, barwnik fluorescencyjny.

Methoxy X04 specyficznie wiąże się z β-plisowanymi strukturami arkuszy w blaszkach amyloidowych i zachowuje swoją fluorescencję do obrazowania i analizy.

Za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego z filtrem UV wzbudz methoxy-X04 i uchwyć emitowaną fluorescencję, aby uwidocznić fluorescencyjnie znakowane blaszki amyloidowe na otaczającej tkance.

Bez regulacji stolika mikroskopu uchwyć obrazy tego samego obszaru w trybie jasnego pola, aby szczegółowo określić strukturę tkanki i w trybie fluorescencji, aby uwidocznić blaszki.

Dopasuj obrazy w jasnym polu i obrazy fluorescencyjne za pomocą oprogramowania do przetwarzania obrazu, aby precyzyjnie odwzorować blaszki na strukturach anatomicznych.

Obrazy te zapewniają szczegółową wizualizację blaszek amyloidowych w ich kontekście strukturalnym w celu zbadania patologii choroby Alzheimera.

Za pomocą stereotaktycznego atlasu mózgu myszy wybierz sekcje mózgu zawierające interesujący Cię obszar i umieść każdą sekcję w krioprotektancie w studzience z 24-dołkową płytką hodowlaną. Następnie za pomocą jednorazowej pipety dodaj kroplę PBS na szkiełko mikroskopowe, a następnie umieść wycinek na kropli.

Zbadaj przekrój pod mikroskopem fluorescencyjnym, aby zidentyfikować obszary zawierające blaszki A-beta znakowane metoksy-X04. Nie przesuwając stolika mikroskopu, uchwyć obrazy interesujących obszarów w jasnym polu, a także w trybie fluorescencji. Każdy obraz musi przedstawiać ten sam region w obu polach, aby skorelować płytkę nazębną z obszarem strukturalnym przekroju tkanki.

Zapisz i nazwij zrobione zdjęcia zgodnie z numerem zwierzęcia. Zapisz również numer studzienki na tabliczce i pole wykonanych zdjęć. Po zakończeniu obrazowania umieść sekcję z powrotem w wyznaczonej studzience. Zbadaj następną sekcję w sekwencji, stosując tę samą procedurę, aby uniknąć wysuszenia sekcji.

Aby wyrównać obrazy, otwórz obrazy jasnego pola i pola UV, aby uzyskać ten sam zwrot z inwestycji na obrazie J. Następnie użyj wtyczki Mosaic J, aby wyrównać krawędzie dwóch obrazów. Zapisz wyrównany i połączony obraz zgodnie z numerem studni w folderze z numerem konkretnego zwierzęcia. Połącz obrazy z różnych sekcji tego samego zwierzęcia, aby zidentyfikować i zlokalizować blaszki w obszarze zainteresowania.

10:04

Obrazowanie tkanek amyloidowych barwionych luminescencyjnymi sprzężonymi oligotiofenami za pomocą hiperspektralnej mikroskopii konfokalnej i obrazowania fluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:27

Analiza nieprawidłowości w strukturze skrzepu fibryny wywołanych przez β-amyloid za pomocą spektroskopii i skaningowej mikroskopii elektronowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:02

Wykrywanie blaszek neurytycznych w mysim modelu choroby Alzheimera

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

01:21

Barwienie tioflawiny-S agregacji amyloidu beta w mózgowej tkance mózgowej myszy z hipoperfuzją

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:59

Wizualizacja peptydów beta-amyloidu w wycinkach ludzkiej kory mózgowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:46

Obrazowanie in vivo naczyń mózgowych i blaszek amyloidowych w mysim modelu choroby Alzheimera

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:01

Wstrzyknięcie domózgowo-komorowe peptydów β amyloidu u normalnych myszy w celu ostrego wywołania deficytów poznawczych podobnych do choroby Alzheimera

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:52

Korelacyjna mikroskopia świetlna i elektronowa do badania interakcji mikrogleju z blaszkami β-amyloidowymi

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:47

Podłużne obrazowanie in vivo naczyń mózgowych: znaczenie dla chorób OUN

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:31

Wizualizacja złogów β amyloidu w ludzkim mózgu za pomocą spektrometrii mas z desorpcją/jonizacją laserową wspomaganą matrycą

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026