Obrazowanie mikrotomografii komputerowej ze wzmocnieniem kontrastowym zmian w malformacjach jamistych mózgu w mózgu myszy

0 wyświetleń3:35 min • May 29th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy chemicznie utrwalony mózg szczeniaka myszy z wadami rozwojowymi jamistymi mózgu lub CCM — skupiskami nieprawidłowych naczyń krwionośnych wypełnionych zastojem krwi.

Odizoluj tyłomózgowie, spłucz buforem i inkubuj w roztworze barwiącym na bazie jodu.

Jod przenika do przepuszczalnych naczyń krwionośnych w obszarach CCM, wiąże się ze składnikami krwi i zwiększa kontrast zmian.

Wysusz tkankę na powietrzu, aby usunąć nadmiar roztworu barwiącego.

Umieść tkankę w tubie i uszczelnij, aby zapobiec kurczeniu się tkanki.

Zabezpiecz rurkę w większej rurce za pomocą gąbek i zamontuj ją pionowo w uchwycie mikro-CT.

Rozpocznij skanowanie.

Źródło promieniowania rentgenowskiego emituje skoncentrowane promieniowanie rentgenowskie, które przechodzi przez tkankę.

Obszary zabarwione jodem pochłaniają więcej promieni rentgenowskich niż otaczająca tkanka.

Detektor rejestruje przesyłane promieniowanie rentgenowskie, generując obrazy, na których CCM wydają się jaśniejsze.

System obraca tkankę, rejestrując obrazy 2D pod różnymi kątami.

Specjalistyczne oprogramowanie rekonstruuje te obrazy w model 3D, ujawniając lokalizacje CCM w mózgu.

Przygotowanie próbki należy rozpocząć od napełnienia 10-mililitrowej strzykawki wyposażonej w igłę o rozmiarze 29 trzema mililitrami 2% paraformaldehydu w PBS. Następnie wykonaj perfuzję wewnątrzsercową na uśpionym poczuciu P8, wkładając igłę do komory serca myszy i powoli wstrzykując pełną objętość paraformaldehydu.

Po użyciu nożyczek do oderwania głowy, usuń skórę z głowy i oderwij czaszkę, używając kleszczy do wypreparowania całego mózgu na 4% paraformaldehydu w PBS. Postfix mózg przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza. Następnego dnia odłącz tylne mózgowie za pomocą kleszczy i spłucz roztworem PBS.

Następnie inkubuj tylne mózgowie w roztworze jodu Lugola przez 48 godzin. Po inkubacji krótko wysusz tylne mózgowie na powietrzu, aby usunąć nadmiar płynu Lugola z jodem. Następnie zapakuj poplamione jodem tylne mózgowie Lugola w probówkach do mikrowirówek o pojemności 0,65 mikrolitra i całkowicie uszczelnij plastikową folią parafinową, aby uniknąć kurczenia się tkanek. Umieść probówki do mikrowirówek w pięciomililitrowych plastikowych probówkach z gąbkami, aby zapobiec ich przesuwaniu się podczas skanowania.

Zamontuj pionowo rurkę zawierającą tyłomózgowie na aluminiowym uchwycie w systemie micro-CT. Ustaw parametry skanowania. Użyj 540 projekcji w ciągu dwóch sekund ekspozycji, przy warunkach źródłowych 50 kilowoltów i 10 watów, aby uzyskać zestawy danych tomograficznych. Zdjęcia rentgenowskie ze skanera rekonstruują go automatycznie za pomocą sprzętowego oprogramowania do rekonstrukcji projekcyjnej dostarczonego przez system mikro-CT, tworząc serię obrazów 16-bitowych wycinków osiowych.

13:10

Połączone obrazowanie fluorescencyjne w bliskiej podczerwieni i tomografia mikrokomputerowa do bezpośredniej wizualizacji choroby zakrzepowo-zatorowej mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:12

Metoda oparta na mikrotomografii komputerowej do charakteryzowania zmian chorobowych i lokalizacji elektrod w mózgach małych zwierząt

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:01

Obrazowanie 3D próbek tkanek miękkich przy użyciu metody barwienia specyficznego dla promieniowania rentgenowskiego i nanoskopowej tomografii komputerowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:50

Obrazowanie naczyń krwionośnych z kontrastem za pomocą mikrotomografii komputerowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:42

Odlew naczyniowo-mózgowy dorosłej myszy do obrazowania 3D i analizy morfologicznej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

12:24

Tomografia fluorescencji rozproszonej w dziedzinie czasu pod kontrolą tomografii komputerowej u małych zwierząt w celu lokalizacji biomarkerów nowotworowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:01

Implantacja kaniuli do Cisterna Magna w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

01:59

Indukcja wad rozwojowych jamistych mózgu za pośrednictwem Cre-LoxP w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:05

Wizualizacja skrzepliny mózgowej u myszy za pomocą obrazowania metodą mikrotomografii komputerowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:12

Indukcja i obrazowanie mikro-tomografią malformacji jamistych mózgu w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 15 sierpnia 2026